Макрофаги играют уникальную и важную роль в различных частях тела, однако точное удаление макрофагов стало ключевым инструментом исследования для лучшего изучения специфических функций макрофагов в определенных областях и их влияния на развитие заболеваний. Липосомы клодроната являются одним из наиболее проверенных, экономически эффективных и идеальных инструментов для удаления макрофагов. Липосомы клодроната можно вводить внутрибрюшинно, в хвостовую вену и различными другими способами для удаления макрофагов из различных тканей.
Далее мы поделимся серией тем, демонстрирующих методы и эффективность удаления макрофагов в различных местах, надеясь предоставить полезные ссылки и справочную информацию для исследователей.
Введение в методы инъекций
Инъекция в вену хвоста
Инъекция в хвостовую вену достигает максимального истощения через 24 ч. Следует обратить внимание на момент обнаружения.
1. Поместите мышей в перевернутый ланч-бокс, вытащите хвост из отверстия, там есть два артерии и три вены в хвосте у мышей, две Артерии находятся на дорсальной и вентральной сторонах хвоста, а три прожилки распределены зигзагообразно, обычно используются левая и правая стороны прожилок;
2. Смочите марлю в теплой воде (примерно 70℃) (или замочите ее в спирте), выньте ее и оберните хвост, чтобы достичь цели расширения сосудов хвоста и смягчить эпидермальный кератин;
3. Для внутривенной инъекции в хвост, большим и указательным пальцами левой руки до и после прижимайте хвост крысы, оставляя участок около 2 см, так чтобы кожа была натянута, вены были более полными, правой рукой держите шприц с иглой 1 мл так, чтобы игла и вена были параллельны (угол менее 30°), от нижней 1/4 хвоста в иглу, начало инъекции препарата должно быть медленным, внимательно наблюдайте, если нет сопротивления, не появились белые дерматомы, это означает, что кровеносные сосуды были проколоты и можно проводить формальную инъекцию препарата.
4、Некоторые эксперименты требуют повторной инъекции в хвостовую вену в течение нескольких дней, место инъекции должно начинаться с конца хвоста, насколько это возможно, и последовательно продвигаться к корню хвоста, и менять положение сосудов для инъекции. После извлечения иглы прижмите место инъекции ватным шариком на 1 - 2 мин. для остановки кровотечения.
Внутрибрюшинная инъекция
Внутрибрюшинная инъекция достигает максимального истощения через 48 - 72 ч. Следует обратить внимание на определение временных точек.
1. Сначала отлавливают мышей методом дорсального захвата, так чтобы их головы были слегка запрокинуты назад, а животы направлены вверх, левую заднюю конечность мышей фиксируют мизинцем, а затем место инъекции стерилизуют ватным тампоном, смоченным 75% спиртом.
2. Место внутрибрюшинной инъекции у мышей составляет 0,5 см по обе стороны от средней линии нижней части живота (на одном уровне с основанием бедра). Чтобы избежать травмирования органов, при вытаскивании мыши ее голову следует наклонить назад, чтобы органы нижней части живота сместились вверх.
3. Проколите иглой шприца кожу, введите подкожную область, продвигайте иглу вперед вдоль подкожной области в течение 2 секунд. - 3 мм, а затем прокалывают брюшную полость мыши под углом 45 градусов между иглой и кожей. Примечание: После проникновения в брюшину сопротивление кончика иглы исчезает.
4. Извлеките иглу обратно, если нет возврата крови или жидкости, можно вводить препарат.
5. После инъекции осторожно поверните иглу, затем медленно вытащите шприц, чтобы избежать утечки жидкости.
Также будут разные методы инъекций для разных участков исследования, например: подкожная инъекция, трахеальное введение, внутричерепная инъекция и т. д. Вам следует обратиться к соответствующей литературе и проконсультироваться с технической командой Yeasen перед экспериментом.
Цикл дозирования и дозировка
Краткосрочное введение: однократная инъекция хлорофосфатных липосом 200 мкл (20 - 25 г) в определенное время для определения эффективности очистки макрофагов или для последующих экспериментов.
Длительное введение: для достижения клиренса макрофагов требуется более одной недели или больше. У мышей дикого типа, например, 200 мкл (20 - 25 г) обычно вводят в качестве первой дозы, затем следует 200 мкл каждые 2-3 дня.
Протокол эталонного испытания
| Орган/Макрофаг | Дозировка (20-25 г/мышь) |
| Макрофаги селезенки/красной пульпы | Разовая доза: 200 мкл/мышь (внутривенно или внутрибрюшинно). |
| Клетки печени/Куффера | Разовая доза: 200 мкл/мышь (внутривенно или внутрибрюшинно). |
| Легочные/альвеолярные макрофаги | Наилучшие результаты дает внутривенное введение (150–200 мкл) в сочетании с интратрахеальным или интраназальным введением (50 мкл). |
| лимфатический узел | Инъекция (100–200 мкл)/мышь, конкретные режимы дозирования можно найти в литературе. |
| Мозг/микроглия | Интрацеребровентрикулярное введение в спинномозговую жидкость, 10 мкл/мышь, 50 мкл/крыса. |
| Кровь/моноциты | 150–200 мкл/мышь (внутривенно). Максимальная скорость истощения достигается в течение 24 часов, но максимальная скорость истощения через 1–7 дней зависит от штамма. |
Примечание: Вышеизложенное дано только для справки. Перед экспериментами ознакомьтесь с соответствующей литературой и проконсультируйтесь с технической командой Yeasen.
Рекомендация по продукту
| Название продукта | Номер товара | Спецификация |
| 40337ES08 | 5 мл | |
| 40337ES10 | 10 мл | |
| 40338ES08 | 5 мл | |
| 40338ES10 | 10 мл |