การจัดลำดับยีนรุ่นถัดไป (NGS) ได้แสดงให้เห็นถึงโอกาสการประยุกต์ใช้ในการวิจัยทางคลินิกและทางวิทยาศาสตร์ที่กว้างขวางอย่างยิ่งในสาขาต่างๆ เช่น การตรวจจับเชื้อก่อโรค การตรวจจับการกลายพันธุ์ของเนื้องอก และพันธุศาสตร์การสืบพันธุ์ เนื่องจากมีความไวในการตรวจจับที่สูง ความจำเพาะที่แข็งแกร่ง และความสามารถในการตรวจจับทั้งแบบเชิงคุณภาพและเชิงปริมาณ การสร้างห้องสมุดซึ่งเป็นขั้นตอนหลักใน NGS ส่งผลโดยตรงต่อคุณภาพของการจัดลำดับ อิงตามแนวทางการตรวจสอบการลงทะเบียนสำหรับผลิตภัณฑ์วินิจฉัยในหลอดทดลอง (IVD) จำเป็นต้องมีข้อมูลการวิจัยของวัตถุดิบหลัก ควรดำเนินการวิเคราะห์และตรวจยืนยันอย่างครอบคลุมโดยรวมปัจจัยต่างๆ เช่น ข้อมูลพื้นฐาน ตัวบ่งชี้พารามิเตอร์ และแหล่งจัดหาของวัตถุดิบเข้าด้วยกัน เพื่อกำหนดแหล่งจัดหาของวัตถุดิบที่เหมาะสมที่สุด กระบวนการสร้างห้องสมุด DNA และ RNA ทั่วไปประกอบด้วยขั้นตอนสำคัญๆ เช่น การสังเคราะห์ cDNA การแบ่งส่วนของ DNA การผูกอะแดปเตอร์ และการขยายห้องสมุด ขั้นตอนต่างๆ ประกอบด้วยเอนไซม์จากวัตถุดิบหลายประเภท การคัดกรองเอนไซม์จากวัตถุดิบทำให้วงจรการวิจัยยาวนานขึ้น บนพื้นฐานนี้ ผลิตภัณฑ์โมดูลการสร้างห้องสมุดที่คุ้มต้นทุนและเรียบง่ายได้กลายมาเป็นทางเลือกใหม่สำหรับการพัฒนาผลิตภัณฑ์ IVD

รูปที่ 1 กระบวนการสร้างห้องสมุด DNA ทั่วไป (ซ้าย) และกระบวนการสร้างห้องสมุด RNA (ขวา) โดยใช้แพลตฟอร์ม Illumina เป็นตัวอย่าง
การสังเคราะห์การถอดรหัสย้อนกลับเป็นส่วนหลัก ของ RNA-Seq, ใหม่ ประเภทของความสูง ประสิทธิภาพของ reverse transcriptase ซึ่งรวมฟังก์ชันต่างๆ ไว้ด้วยกัน เช่น ความไวสูง สูง ผลผลิต ของ cDNA และความเข้ากันได้กับเทมเพลตของโครงสร้างที่ซับซ้อนเป็นจุดศูนย์กลางของการวิจัย แพลตฟอร์มดัดแปลงเอนไซม์ ZymeEditor™ ของ
รูปที่ 2 ประสิทธิภาพของ 13488ES ที่นำไปใช้ใน RNA-seq
เนื่องจากความยาวการอ่านที่สั้นของแพลตฟอร์มการจัดลำดับ DNA จึงจำเป็นต้องถูกแบ่งส่วนแบบสุ่มก่อนสร้างไลบรารี ในระยะเริ่มแรก การแบ่งส่วนของเอนไซม์เป็นเรื่องน่ากลัวเนื่องจากปัญหาเรื่องความสม่ำเสมอและอคติ
รูปที่ 3 ผลกระทบจากการแตกตัวของเอนไซม์แตกตัวของ DNA ที่แตกต่างกัน: เอนไซม์แตกตัวที่ออกฤทธิ์รุนแรง (ซ้าย) และเอนไซม์แตกตัวที่ออกฤทธิ์อ่อน (ขวา)
อัตราการแปลงห้องสมุดเป็นตัวบ่งชี้ที่สำคัญในการประเมินคุณภาพของห้องสมุด อัตราการแปลงห้องสมุดที่สูงในระดับหนึ่งหมายถึงห้องสมุดมีความสมบูรณ์มากขึ้นและมีข้อมูลการเรียงลำดับที่มีความสม่ำเสมอมากขึ้น ลิเกส DNA T4 ทั่วไปมุ่งเน้นที่การปรับให้การเชื่อมต่อมีประสิทธิภาพสูงขึ้น แต่ชิ้นส่วนต่างๆ มีแนวโน้มที่จะเชื่อมต่อด้วยตัวเอง ซึ่งจะลดอัตราการแปลงไลบรารี และส่งผลต่อความสมบูรณ์ของไลบรารีและคุณภาพของการจัดลำดับ การ
รูปที่ 4 การวิเคราะห์เสถียรภาพทางความร้อนและสารตกค้างของตัวเชื่อมของ 12996ES
เอนไซม์ขยาย PCR ทั้งหมดจำเป็นสำหรับวิธีการเตรียมห้องสมุด NGS ดีเอ็นเอโพลีเมอเรสที่มีความเที่ยงตรงสูงส่วนใหญ่มีกิจกรรมโพลีเมอเรส 5'→3' และกิจกรรมเอ็กโซนิวคลีเอส 3'→5' สามารถสังเคราะห์ DNA ได้ในทิศทาง 5'→3' พร้อมทั้งแก้ไขเบสที่ผสมเข้าไปอย่างผิดพลาด ด้วยเหตุนี้ จึงสามารถขยายชิ้นส่วน DNA ได้อย่างรวดเร็วและมีความเที่ยงตรงสูง แต่มีเอนไซม์เพียงไม่กี่ชนิดที่ได้รับการออกแบบเฉพาะสำหรับ NGS ผลิตภัณฑ์ขยายห้องสมุดที่มีประสิทธิภาพ แม่นยำ เฉพาะเจาะจง และสามารถขยายเป้าหมายที่มีขนาดและเนื้อหา GC ต่างกันได้โดยไม่ลำเอียง และยังสามารถผสมไพรเมอร์ไว้ล่วงหน้าได้ด้วย
รูปที่ 5 การวิเคราะห์อัตราความผิดพลาดในการขยายและความเสถียรของ 12980ES
นอกเหนือจากผลิตภัณฑ์โมดูลการสร้างห้องสมุด NGS ซีรีส์ข้างต้นแล้ว เรายังมีผลิตภัณฑ์เอนไซม์ดิบแบบครบวงจรอีกด้วย เพื่อตอบสนองความต้องการผสมผสานของลูกค้าที่แตกต่างกัน
หมวดหมู่สินค้า | ชื่อสินค้า | เลขที่แมว | หมายเหตุ |
การสังเคราะห์ cDNA ที่มีประสิทธิภาพ | ไฮแฟร์™ อุลตรารีเวิร์สทรานสคริปเทส (200 U/μL) | 14604ES | เอนไซม์ถอดรหัสย้อนกลับ |
ไฮเอฟเอ็นจีเอส™ ชุดสังเคราะห์ ds-cDNA | 13488ES | โมดูลการสังเคราะห์ cDNA | |
ดีเอ็นเอ การแตกกระจาย & การซ่อมแซมปลาย & การแยกส่วน | ไฮฟ์™ สเมอเรส | 12907ES | ดีเอ็นเอแฟรกเมนเทส |
โมดูลการแยกส่วน DNA OnePot Pro ของ Hieff NGS™ (การซ่อมแซมปลายสายและการแยกส่วน dA เพิ่มเติม) | 12619ES | ดีเอ็นเอ โมดูลการแยกส่วนและการซ่อมแซมปลายและการแยกส่วนท้าย | |
ซ่อมแซมและบำรุงรักษา | โมดูลการซ่อมแซมปลายท่อ/การต่อ dA แบบรวดเร็ว Hieff NGS® | 12608ES | โมดูลการซ่อมแซมปลายสายและส่วนต่อท้าย |
การผูกอะแดปเตอร์ | 10299ES | เอนไซม์ไลเกสดีเอ็นเอ T4 | |
การขยายเสียงห้องสมุด | มิกซ์ขยายเสียง Ultima HF 2× | 13344ES | เอนไซม์ความเที่ยงตรงสูง |