คำอธิบาย
ข้อมูลจำเพาะ
ผลิตภัณฑ์มีรูปแบบสารละลาย และผงจะถูกสร้างใหม่ใน NaCl 0.9% เพื่อให้ได้สารละลาย 10 มก./มล. จากนั้นจึงฆ่าเชื้อโดยใช้ตัวกรองขนาด 0.22 ไมโครเมตร โดยทั่วไปจะเจือจางในอัตราส่วน 1:1000-1:2000 สำหรับการใช้งาน โดยมีอัตราส่วนการเจือจางเฉพาะขึ้นอยู่กับชนิดของเซลล์ตามที่ระบุไว้ในเอกสารที่เกี่ยวข้อง
การขนส่งและการเก็บรักษา
แนะนำให้ขนส่งและจัดเก็บที่อุณหภูมิ -20 องศาเซลเซียส โดยมีอายุการเก็บรักษา 2 ปี แนะนำให้แบ่งส่วนและจัดเก็บเพื่อหลีกเลี่ยงการแช่แข็งและละลายซ้ำๆ
ข้อควรระวัง:
-
สวมชุดห้องปฏิบัติการและถุงมือแบบใช้แล้วทิ้งเพื่อความปลอดภัยและสุขภาพ
-
ผลิตภัณฑ์นี้มีวัตถุประสงค์เพื่อการวิจัยเท่านั้น
ขั้นตอนการดำเนินงาน
(สำหรับการอ้างอิง ความเข้มข้นที่เฉพาะเจาะจงอาจแตกต่างกัน โปรดดูเอกสารที่เกี่ยวข้อง):
หมายเหตุ: โพลีเบรนอาจแสดงความเป็นพิษอย่างมีนัยสำคัญต่อเซลล์บางชนิด (เช่น เซลล์ประสาทที่แยกความแตกต่างในระยะสุดท้าย เซลล์ DC) และแนะนำให้ทดสอบความเป็นพิษก่อนการใช้ครั้งแรก
การทดลองที่ 1: การติดเชื้อไวรัสย้อนกลับ
-
การเตรียมสต็อกเรโทรไวรัสแบบรีคอมบิแนนท์: เพาะเลี้ยงเซลล์ที่มีโมโนเลเยอร์ของเซลล์ที่บรรจุเรโทรไวรัสที่ผ่านการทรานส์เฟกชันในจานขนาด 100 มม. พร้อมอาหารเลี้ยงเชื้อ 5 มล. (เซรั่ม 5%) หลังจากผ่านไป 24 ชั่วโมง ให้เอาอาหารเลี้ยงเชื้อออกแล้วกรองผ่านตัวกรองขนาด 0.45 ไมโครเมตร
-
การเพาะเลี้ยงเซลล์เพื่อการติดเชื้อ: ในจานขนาด 100 มม. เติมอาหารเพาะเลี้ยงที่สมบูรณ์ 10 มล. ที่มีความหนาแน่นของเซลล์ 5 เท่า105 ต่อจาน
-
การติดเชื้อไวรัส: หลังจากเพาะเลี้ยงเซลล์เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ให้แยกอาหารเลี้ยงเชื้อทั้งหมดออก ติดเชื้อเซลล์ด้วยของเหลวเหนือตะกอนไวรัส 2 มล. ที่มีโพลีเบรน (ความเข้มข้นสุดท้าย: 5-10 μg/mL) ที่อุณหภูมิ 37°C เป็นเวลา 3-6 ชั่วโมง
-
เก็บอนุภาคไวรัส: เติมอาหารเลี้ยงเชื้อที่สมบูรณ์ 8 มล. หลังจากเพาะเชื้อเป็นเวลา 2-3 วัน ให้เก็บอาหารเลี้ยงเชื้อเพื่อรับอนุภาคไวรัส
การทดลองที่ 2: การถ่ายโอนยีน
-
เพาะเลี้ยงเซลล์ในอาหารเลี้ยงเชื้อที่สมบูรณ์โดยมีความหนาแน่นของเซลล์ประมาณ 50%
-
หลังจากเพาะเลี้ยงเซลล์เป็นเวลา 18-24 ชั่วโมง ให้เตรียมส่วนผสมของอาหารเลี้ยงเชื้อ DNA-โพลีเบรน เติมอาหารเลี้ยงเชื้อที่สมบูรณ์ (2 มล. สำหรับจานขนาด 60 มม., 3 มล. สำหรับจานขนาด 100 มม.) และอุ่นเครื่องไว้ที่ 37°C ผสมพลาสมิด 10 นาโนกรัม~10 ไมโครกรัมเบาๆ เติมโพลีเบรนจนมีความเข้มข้นสุดท้าย 5-10 μg/mL ผสมเบาๆ ควรเติมส่วนประกอบแต่ละอย่างตามลำดับที่กำหนด
-
นำอาหารเลี้ยงเชื้อออกแล้วเติมสารละลายโพลีเบรนสำหรับเลี้ยงเชื้อ DNA ลงในเซลล์ที่อุณหภูมิ 37°C เป็นเวลา 6-20 ชั่วโมง ค่อยๆ ผสมทุกๆ 1.5 ชั่วโมงภายใน 6 ชั่วโมงแรกของการเลี้ยงเซลล์
-
นำสารละลายโพลีเบรนซึ่งเป็นตัวกลางในการเจริญ DNA ออก คลุมเซลล์ด้วยสารละลายช็อก DMSO (DMSO 15% ใน 1× HBSS)เขย่าจานเพาะเชื้อเบาๆ เป็นเวลา 10 วินาทีทุกครั้งที่เติมสารละลายลงไป เพื่อให้กระจายตัวอย่างสม่ำเสมอ ฟักเซลล์ที่อุณหภูมิ 37°C เป็นเวลา 4 นาที
-
รีบนำสารละลายช็อก DMSO ออกทันที แล้วล้างเซลล์เบาๆ สองครั้งด้วยอาหารเลี้ยงเชื้อที่สมบูรณ์ สำหรับจานขนาด 60 มม. ให้ล้างด้วยอาหารเลี้ยงเชื้อ 5 มล. ทุกครั้ง และสำหรับจานขนาด 100 มม. ให้ล้างด้วยอาหารเลี้ยงเชื้อ 10 มล. ทุกครั้ง
-
เติมอาหารเจริญเติบโตที่สมบูรณ์ให้แก่เซลล์
-
การแสดงออกของโปรตีน: หลังจากผ่านการเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 24-72 ชั่วโมง ให้รวบรวมเซลล์เพื่อวิเคราะห์การแสดงออกของโปรตีนตามความจำเป็น
การคัดเลือกเซลล์: หลังจากเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 24-72 ชั่วโมง ขึ้นอยู่กับสถานะเซลล์ ให้เปลี่ยนไปใช้ตัวกลางการคัดเลือกสด และดำเนินการคัดเลือกเซลล์ต่อไป
การชำระเงินและความปลอดภัย
ข้อมูลการชำระเงินของคุณได้รับการดำเนินการอย่างปลอดภัย เราไม่เก็บรายละเอียดบัตรเครดิตและไม่สามารถเข้าถึงข้อมูลบัตรเครดิตของคุณได้
การสอบถาม
คุณอาจชอบ
คำถามที่พบบ่อย
ผลิตภัณฑ์นี้มีวัตถุประสงค์เพื่อการวิจัยเท่านั้น และไม่ได้มีวัตถุประสงค์เพื่อใช้ในการรักษาหรือวินิจฉัยโรคในมนุษย์หรือสัตว์ ผลิตภัณฑ์และเนื้อหาได้รับการคุ้มครองโดยสิทธิบัตร เครื่องหมายการค้า และลิขสิทธิ์ที่เป็นของ
แอปพลิเคชั่นบางตัวอาจต้องใช้สิทธิ์ในทรัพย์สินทางปัญญาของบุคคลที่สามเพิ่มเติม