説明
MycAway™ マイコプラズマ qPCR 検出キットは、原材料、細胞バンク、ウイルス シード、ウイルスまたは細胞採取溶液、臨床治療で使用される細胞など、さまざまなソースにおけるマイコプラズマ汚染の定性検出用に設計された製品です。このキットは Taqman 蛍光プローブ (FAM および VIC) を使用し、多重ポリメラーゼ連鎖反応 (PCR) 技術を使用してターゲットと内部コントロールを個別に検出します。EP <2.6.7> 標準に従って特異性、検出限界、堅牢性が検証されており、高い感度、特異性、効率、安全性が実証されています。検出限界は 10 CFU/mL 以下です。
核酸抽出には、手動抽出法を採用した MolPure® 磁気残留 DNA サンプル調製キット (カタログ番号 18461) と併用できます。あるいは、サンプル内の核酸は、AutoPure 32A 自動核酸抽出装置 (カタログ番号 80501) および MolPure® Mag32 残留 DNA サンプル調製キット FA (カタログ番号 18462) を使用して自動的に抽出できます。カタログ番号 18461 およびカタログ番号 40619 を含むキットは、包括的な検証を受けていることに注意してください。詳細な検証情報については、当社のテクニカル サポートにお問い合わせください。サンプルを前処理して干渉不純物を除去し、精製された核酸を得た後、リアルタイム PCR アンプを使用して qPCR 反応を実行し、プローブからの蛍光信号を収集して分析します。
カタログ番号 |
40619ES25 / 40619ES60 |
サイズ |
25トン/100トン |
検出限界 |
10 CFU/mL |
検出方法 |
qPCR法(Taqman蛍光法) |
間隔 |
4時間 |
蛍光プローブ |
FAM(ターゲットチャネル);VIC(内部チャネル) |
覆われたマイコプラズマ |
≥ 100 |
検証 |
EP <2.6.7>に従って検証済み |
コンポーネント
コンポーネント番号 |
名前 |
40619ES25 |
40619ES60 |
40619-A |
4×MyqPCR反応バッファー |
250μL |
1mL |
40619-B |
マイプライマー&プローブミックス |
25μL |
100μL |
40619-C* |
内部統制(IC) |
25μL |
100μL |
40619-D** |
陽性コントロール(PC) |
500μL |
2mL |
40619-E*** |
DNA希釈バッファー |
1mL |
4×1mL |
40619-F**** |
超純水 |
500μL |
2×1mL |
*IC: 内部統制;
**PCS: 陽性コントロール溶液、濃度は1,000コピー/µLです。
***DNA希釈バッファー: IC希釈およびNTCとNCSのテンプレートに使用されます。
****超純水: qPCR Mix の調製に使用します。
ストレージ
この製品は-25〜-15℃で2年間保存する必要があります。
*キットを受け取ったら、すべてのコンポーネントが揃っているかどうかを確認し、すぐにアッセイを行わない場合は、-25〜-15℃の条件ですぐに保管してください。40619-Bは光を避けて保管する必要があることに注意してください。
説明書
- 実験前の準備
1)実験で使用する必要な試薬や材料を準備します。
2)qPCR装置の適合性を確認する
このキットは、以下のタイプの qPCR 機器で使用できます。
- バイオ・ラッド: CFX96
- サーモサイエンティフィック:7500 リアルタイム PCR システム;QuantStudio™5;
- 実験方法
1) DNA抽出
DNA抽出には「磁気残留DNAサンプル調製キット」(手動抽出の場合はCat#18461ES、自動抽出の場合はCat#18462ES)の使用をお勧めします。詳細については、「http:/www.yeasenbiotech.com」をご覧ください。
詳細情報と購入。
キット(カタログ番号40619ES)には内部コントロール(IC)が含まれています。DNA抽出前にサンプルにICを加えると、完全なプロセス(DNA抽出とqPCR反応を含む)を検証できます。qPCRマスターミックスにICを加えると、
直接使用する場合、IC は qPCR コントロールとしてのみ機能します。
2)qPCRミックスの調製
- 陽性コントロール(PCS)、テンプレートなしコントロール(NTC)、陰性コントロール溶液(NCS)、テストサンプル(TS)を含むサンプル量に応じて、反応回数を計算します。2つの反応を並行して準備します。
各サンプルは一般的に。
* PCS:陽性コントロール溶液;NTC:テンプレートなしコントロール;NCS:陰性コントロール溶液;TS:試験サンプル。実施する必要はありません。
PCS と NTC のサンプル抽出は可能ですが、NCS と TS は必要です。
反応ウェル(M1)=(1×NCS + N×TS) ×2
反応ウェル(M2)=(1×PCS + 1×NTC) ×2
反応ウェル(M3)=(1×PCS + 1×NTC+ N×TS) ×2
- 実験計画と以下の表に従って、必要な量の試薬を氷上で事前に解凍します。
- 反応回数に応じてqPCRミックスの量を計算します。キットを製品リリースなどのGMP活動に使用する場合は、表1と2を使用して準備することをお勧めします。キットを研究のみに使用し、評価後の抽出前にICを追加する必要がない場合は、表3に従ってください。
準備。M1、M2、M3 のすべてを準備する必要はないことに注意してください。
成分 |
容量(1×40μL反応) |
容量(M1×40μL) |
4×MyqPCR反応バッファー |
10μL |
(M1+2)×10μL |
マイプライマー&プローブミックス |
1μL |
(M1+2) ×1μL |
ロックス |
0.8μL /0μL** |
(M1+2)×0.8μL /0μL |
精製水 |
最大20μL |
最大(M1+2)×20μL |
合計 |
20μL |
(M1+2)×20μL |
表1 M1用qPCRミックスシステム
*表1の構成システムは、NCSとTSの両方で抽出前にICを追加することを前提としているため、
qPCRミックス調製時にICを追加します。抽出前のIC添加方法:まず、DNA希釈液でICを20倍に希釈し、1μLを加えます。
さらなる抽出のために、希釈した IC を各 100μL のテストサンプルに添加します。
**このキットにはROXリファレンスダイは含まれていません。現在使用しているリアルタイムPCRアンプにROXリファレンスダイが必要な場合は、50×ROXリファレンスダイ(カタログ番号10200ES)の使用をお勧めします。この場合、追加量は表1に示すように0.8μLです。他のものを使用する場合は、
ROX 製品のブランドについては、ROX の添加に関する説明書を参照してください。ROX 参照色素が不要な場合は、添加量は 0 μL です。
成分 |
容量(1×40μL反応) |
容量(M2×40μL) |
4×MyqPCR反応バッファー |
10μL |
(M2+2) ×10μL |
マイプライマー&プローブミックス |
1μL |
(M2+2) ×1μL |
内部統制(IC) |
1μL* |
(M2+2) ×1μL /0μL |
ロックス |
0.8μL /0μL** |
(M2+2) ×0.8μL /0μL |
精製水 |
最大20μL |
最大(M2+2)×20μL |
合計 |
20μL |
(M2+2)×20μL |
表2 M2用qPCRミックスシステム
*表2の構成システムは、抽出前にPCSとNTCにICが添加されていないことを前提としているため、qPCR Mixの調製中にICを添加する必要があります。抽出後のIC添加方法:DNA希釈液でICを100倍に希釈し、希釈したIC 1μLをqPCR Mixに添加します。
各qPCRミックスシステム。
**このキットにはROXリファレンスダイは含まれていません。現在使用しているリアルタイムPCRアンプにROXリファレンスダイが必要な場合は、50×ROXリファレンスダイ(カタログ番号10200ES)の使用をお勧めします。この場合、追加量は表1に示すように0.8μLです。他のものを使用する場合は、
ROX 製品のブランドについては、ROX の添加に関する説明書を参照してください。ROX 参照色素が不要な場合は、添加量は 0 μL です。
成分 |
容量(1×40μL反応) |
容量(M3×40μL) |
4×MyqPCR反応バッファー |
10μL |
(M3+2)×10μL |
マイプライマー&プローブミックス |
1μL |
(M3+2) ×1μL |
内部統制(IC) |
1μL* |
(M3+2) ×1μL /0μL |
ロックス |
0.8μL /0μL** |
(M3+2) ×0.8μL /0μL |
精製水 |
最大20μL |
最大(M3+2)×20μL |
合計 |
20μL |
(M3+2)×20μL |
表3 M3用qPCRミックスシステム
*表3の構成システムは、抽出前にサンプルにICを添加しないことを前提としているため、qPCR Mixの調製中にICを添加する必要があります。抽出後のIC添加方法:DNA希釈液でICを100倍に希釈し、各qPCR Mixに1μL添加します。
システム。
**このキットにはROXリファレンスダイは含まれていません。現在使用しているリアルタイムPCRアンプにROXリファレンスダイが必要な場合は、50×ROXリファレンスダイ(カタログ番号10200ES)の使用をお勧めします。この場合、追加量は表1に示すように0.8μLです。他のものを使用する場合は、
ROX 製品のブランドについては、ROX の添加に関する説明書を参照してください。ROX 参照色素が不要な場合は、添加量は 0 μL です。
3)テンプレートの追加
- qPCRミックスを十分に振って混ぜ、低速で遠心分離し、キャップから残留液を回収します。
チューブの底まで。
- 各反応チューブ/ウェルに20μLのqPCRミックスを加えます。各反応チューブ/ウェルに対応するqPCRミックスを加えることに注意してください。
サンプルチューブを使用してエラーの追加を回避します。
- qPCR ミックスが入ったチューブ/ウェルにテンプレートを追加します。テンプレートの追加については、表 4 を参照してください。
テストサンプル |
各チューブまたはウェルには… |
TS |
20 μL qPCR ミックス + 20 μL 抽出後のサンプル |
NTSC について |
20 μL qPCR ミックス + 20 μL DNA 希釈バッファー |
NCS* |
20 μL qPCR ミックス + 20 μL 抽出後のネガティブ サンプル* |
PCS |
20 μL qPCRミックス + 20 μL ポジティブコントロール |
表4 テンプレートの追加
*DNA抽出用のNCSのテンプレートとしてDNA希釈バッファー(40619-E)を使用することをお勧めします。
**各チューブ/ウェルの総反応容量は40 μLです。
***チューブの蓋またはプレートフィルムを覆います。蛍光信号の読み取りに影響を与えないように、チューブの蓋やフィルムに跡が付かないように注意してください。
または、スクレーパーでフィルムを繰り返しこすります。
****テンプレートを加えた後、反応チューブまたはプレートを低速で短時間遠心分離します。十分に振とうして混合した後、遠心分離を繰り返します。
低速で蓋や壁から底に液体を集めます。操作中に泡が出ないようにしてください。ミックスが
よく混ざっていないので、このステップは良い実験結果を得るために非常に重要です。
4)qPCRプログラムの設定
- プログラムファイル設定
例 (7500 リアルタイム PCR システム機器とリアルタイム PCR ソフトウェア v2.4):
機器タイプ:7500 (96ウェル)
実験タイプ:定量-標準曲線;
化学:Taqman®試薬
ランプ速度:標準(1回の走行に約2時間)
- ターゲットチャネル設定
「プレート設定」の「ターゲットとサンプルの定義」で、ターゲット 1 チャネル (FAM) を作成し、レポート蛍光グループとして FAM を選択し、消光蛍光グループとして MGB またはなしを選択します。ターゲット 2 チャネル (VIC) を作成し、レポート蛍光グループとして VIC を選択し、消光蛍光グループとしてなしを選択します。「プレート設定」の「ターゲットとサンプルの割り当て」で、追加の ROX 色素が追加されていない場合は「なし」を選択します。追加の ROX が追加されている場合は、
ロックス。
- 標準増幅プログラム設定
シリアル番号 |
反応段階 |
温度 |
時間 |
サイクル |
1 |
初期変性 |
95℃ |
5分 |
1 |
2 |
変性 |
95℃ |
15秒 |
45 |
3 |
アニーリング/延長 (蛍光信号収集) |
62℃ |
30秒 |
表5 標準増幅プログラム設定
- ベースラインとしきい値の設定:
ベースライン調整の原則:通常は自動ベースラインを使用します。手動で調整する必要がある場合は、指数関数的増殖期の前のサイクルを開始サイクルとして選択し、初期蛍光収集の変動ゾーンを避けます。最も早い指数関数的増幅サンプルのCtの1〜2サイクル前のサイクルを終了サイクルとして選択します。
終点。
閾値調整の原則:通常は自動閾値を使用します。手動で調整する必要がある場合は、閾値をネガティブサンプルまたはベースラインノイズよりも高く設定する必要があります。通常は、閾値を後半に設定します。
指数関数的増幅の段階では、各トンネルごとに相対的に独立した適切な閾値が必要です。
5)結果分析
- PCS、NTC、NCSの結果判定:
ICが追加された場合:各コントロールサンプルの仕様は表6を満たす必要があります。
コントロールサンプル |
FAMシグナル |
VICシグナル |
PCS |
Ct < 40、明らかな増幅曲線を有する |
Ct値<40で明らかな増幅曲線を有する |
NTSC について |
Ct ≥ 40または明らかな増幅曲線なし |
Ct値<40で明らかな増幅曲線を有する |
NCSC の |
Ct ≥ 40または明らかな増幅曲線なし |
Ct値<40で明らかな増幅曲線を有する |
表6 PCS、NTC、NCSの結果判定
ICを添加していない場合:各品質管理サンプルは表6のFAM信号列の仕様を満たし、
VIC チャネルを分析する必要があります。
- TSの結果判定
前提条件: TS結果の分析の前に、PCS、NTC、NCSが表6の仕様を満たしているかどうかを判断する必要があります。合格した場合は、次のステップに進むことができます。合格しなかった場合、TS結果は信頼できない可能性があり、
その理由を調査する必要がある。
ICが追加された場合: 表7のFAMとVICの結果情報に従って対応する結果判定を見つけます。
FAMシグナル |
VICシグナル |
結果判定 |
Ct<40であり、明らかな 増幅曲線 |
Ct<40で明らかな増幅曲線を有する |
ポジティブ |
Ct≥40または明らかな増幅曲線なし |
抑制が存在する場合、 実験を繰り返す必要がある |
|
Ct≥40または明らかな異常なし 増幅曲線 |
Ct<40で明らかな増幅曲線を有する |
ネガティブ |
Ct≥40または明らかな増幅曲線なし |
抑制が存在する場合、 実験を繰り返す必要がある |
表7: TSの結果判定(IC追加)
*VIC 信号に阻害がある場合は、阻害因子を除去するための処置、またはテストを繰り返す必要があります。
ICが追加されていない場合:表8のFAMの結果情報に従って対応する結果判定を見つけ、VIC信号を分析する必要はありません。
FAMシグナル |
結果判定 |
Ct<40で明らかな増幅曲線を有する |
ポジティブ |
Ct≥40または明らかな増幅曲線なし |
ネガティブ |
表8: TSの結果判定(IC未添加)
注記
- このキットを使用する前に、このマニュアルをよくお読みください。サンプルの取り扱い、反応システムの準備、サンプルの添加など、実験は標準化された方法で行う必要があります。
- 可能であれば、サンプルの追加と試薬の準備の操作は氷上で行ってください。
- 使用前に各試薬をボルテックスしてよく混ぜてください。
- 安全のため、白衣と使い捨て手袋を着用して作業してください。
- この製品は研究目的にのみご使用いただけます。
[1] Zhao F, Wang X, Li Y, Chen X, Geng Z, Zhang C. 急性熱ストレスを受けたブロイラーの肉質と筋肉の抗酸化能に対するエピガロカテキンガレートの食事性補給の影響。Animals (Basel). 2021;11(11):3296. 2021年11月18日発行。doi:10.3390/ani11113296(IF:2.752)
支払いとセキュリティ
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よくある質問
この製品は研究目的のみに使用され、人間や動物の治療や診断に使用することを意図したものではありません。製品とコンテンツは、
特定のアプリケーションでは、追加のサードパーティの知的財産権が必要になる場合があります。