De laatste jaren hebben mRNA-gebaseerde geneesmiddelen veel aandacht gekregen en de aandacht getrokken van wetenschappelijk onderzoek. T7 RNAP staat bekend om zijn eenvoud en het vermogen om RNA-synthese te katalyseren met een hoge opbrengst en trouw in vitro. Tijdens het transcriptieproces kan T7 RNAP echter bijproducten produceren zoals mislukte korte RNA's, voortijdig beëindigde RNA's en 3'-verlengde RNA's, wat gunstige omstandigheden creëert voor de vorming van dsRNA. Daarom is het verminderen van de productie van dsRNA een dringende behoefte geworden in praktische toepassingen.

Onlangs werd een baanbrekend onderzoek gepubliceerd met de titel "FADS en semi-rationeel ontwerp gemodificeerde T7 RNA polymerase verminderde dsRNA productie, met lagere terminale transferase en RDRP activiteiten" werd online gepubliceerd door Yeasen en Molefuture Team. Onderzoekers hebben T7 RNAP succesvol ontworpen om de productie van dsRNA-bijproducten tijdens transcriptie aanzienlijk te verminderen, door het te reduceren tot 1,8% van het wildtype-enzym door een combinatie van gerichte evolutie en semi-rationeel ontwerp.

FADS-gebaseerde screening van T7 RNAP

Voor het screenen van T7 RNAP werd FADS (Fluorescence-activated droplet sorting) gekozen om te voldoen aan de hoge-doorvoervereisten van proteïne-evolutie. Om voortijdige fragmentatie van cellen te voorkomen, gebruikten onderzoekers een PDMS-chip met dubbele waterige fasen, waarbij lysozyme werd gemengd met de cellen op de chip en zijn activiteit uitoefende in de druppels Figuur 1Onderzoekers hebben verschillende willekeurige mutantenbibliotheken gegenereerd met een diversiteit variërend van 105 tot 106Na screening werden 10 dominante varianten geïdentificeerd en aangeduid als Mut1 tot Mut10.  Zoals getoond in Figuur 2E En Figuur 2F, het dsRNA-gehalte van Mut1, Mut7 en Mut9 was aanzienlijk lager dan dat van het wildtype

Figuur 1. Overzicht van de FADS

Figuur 2. Willekeurige bibliotheekscreening en variantenevaluatie

Semi-rationeel ontwerp van T7 RNAP

Onderzoekers voerde een semi-rationeel ontwerponderzoek uit, creëerde tien verzadigde bibliotheken op één locatie en gebruikte de traditionele op microtiterplaten gebaseerde dual probes-methode voor screening(Figuur 3). De toegevoegde 5'-uiteinde-sonde wordt gebruikt voor de detectie van de RNA-opbrengst.

Figuur 3. Structuurgestuurd semi-rationeel ontwerp voor verlaagd dsRNA

Na het screenen van meer dan 1000 mutanten, hebben onderzoekers identificeerde zes kandidaten: Mut11 (K180E), Mut12 (S228F), Mut13 (G238L), Mut14 (A70Q), Mut15 (A383H) en Mut16 (I743L). De totale RNA-opbrengst van alle zes mutanten verschilde niet significant van het wildtype, wat duidt op vergelijkbare algehele transcriptie-efficiëntie. Zoals verwacht was de dsRNA-inhoud van Mut11 en Mut14 significant lager vergeleken met het wildtype(Figuur 4).

Figuur 4. Microtiterplaatscreening en variantevaluatie

Mut17 uit DNA-shuffelen levert minder dsRNA op

Om de T7 RNAP verder te optimaliseren, werden de vier varianten met een laag dsRNA-gehalte en die toch aan de productievereisten voldeden, geselecteerd.Onderzoekers construeerden vervolgens een DNA-shufflingbibliotheek en screenden met microtiterplaten, waarbij ze een variant identificeerden die een lagere dsRNA-productie vertoonde in vergelijking met zijn ouderlijke T7-RNAP, genaamd Mut17 (A70Q/F162S/K180E). Vervolgens analyseerden ze de transcriptionele producten van Mut17 en zijn ouderlijke varianten (Mut14, Mut11 en Mut7). Zoals getoond in Figuur 5, alle vier varianten vertoonden significante reducties in dsRNA-productie tijdens transcriptie vergeleken met het wildtype. Opmerkelijk genoeg vertoonde Mut17 een significant lager dsRNA-gehalte van slechts 1,80% en zo laag als 0,007 ng/μg in het oplosmiddelsysteem van screening.

Figuur 5. dsRNA-inhoud van Mut17 en zijn ouderlijke mutaties

De immunogeniciteit van het IVT-product van de mutant is aanzienlijk lager dan die van het wilde type.

Volgende, We hebben de immunogeniciteit van de IVT-producten bij muizen met RA geëvalueerdW264.7 cellen. Zoals weergegeven in Figuur 2A en 2B, waren de IFN-β mRNA- en eiwitniveaus verlaagd in RAW264.7 cellen die getransfecteerd zijn met mRNA geproduceerd door mutanten vergeleken met wildtype, wat aangeeft dat mRNA gesynthetiseerd door het wildtype T7 RNAP de sterkste immuunrespons opriep, terwijl mRNA van de mutanten een aanzienlijk verminderde respons liet zien. Specifiek was het IFN-β mRNA van cellen behandeld met Mut11 RNA slechts 9,7% van de wild-type behandelde cellen, en zijn eiwit was 12,93 pg/mL. Bovendien vertoonde de expressie van EGFP geen significante verschillen in kwantiteit of kwaliteit tussen mRNA's gegenereerd door verschillende T7 RNAP's (Figuur 6C), die voldoen aan de eisen voor industriële toepassingen.

Figuur 6. IFN-β-respons en EGFP-expressie in zoogdiercellen

De RDRP- en terminale transferase-activiteiten van de mutant zijn veel lager.Wijr dan die van het wilde type.

Om de impact van mutaties op de reductie van dsRNA te onderzoeken, hebben onderzoekers uitgevoerd in silico-onderzoeken naar al deze mutaties. Het resultaat suggereert een duidelijke indicatie van verminderde RDRP-activiteit in de varianten, aangezien ze een verminderde neiging vertonen om RNA als template te gebruiken. Op dezelfde manier kan dit een impact hebben gehad op de terminale transferase-activiteit van T7 RNAP. Zoals getoond in Figuur 7, onder verschillende concentraties vertoonden alle 4 varianten minder dan 50% van de fluorescentiewaarde vergeleken met het wildtype.

Vervolgens werd een 3'-end heterogeniteitstest gebruikt om de terminale transferactiviteit van T7 RNAP te karakteriseren. Wanneer de focus lag op de verhouding RNA met n>0, wat de terminale transferaseactiviteit weerspiegelt, vonden dat deze RNA's 82,94% van het wildtype uitmaakten, terwijl de mutanten de volgende percentages vertoonden: Mut11 (70,29%), Mut7 (67,88%), Mut14 (63,31%) en Mut17 (55,62%) (Figuur 8)Belangrijk is dat deze percentages zeer consistent zijn met de hoeveelheid dsRNA in de producten (Figuur 5)Deze resultaten duiden op een significante reductie in terminale transferase-activiteit van mutanten, wat, samen met de afname in RDRP-activiteit, bijdraagt ​​aan de afname in dsRNA.Specifiek kan de terminale transferase-activiteit een crucialere rol spelen, zoals blijkt uit de laagste accumulatie van n>0 RNA's die is waargenomen in Mut17, dat ook de laagste dsRNA-productie vertoont (Figuur 5 en Figuur 8).

Figuur 7Relatieve RDRP-activiteit

Figuur 8Heterogeniteit in het 3'-uiteinde van RNA-producten

Conclusie

Deze studie levert een robuuste methodologie voor het identificeren van mutanten met een verlaagd dsRNA-gehalte en isoleert succesvol meerdere dsRNA-mutanten met een verlaagde RNA-afhankelijke RNA-polymerase- en terminale transferase-activiteit. Het versterkt de validatie van veiligheid en werkzaamheid die integraal zijn voor mRNA-therapieën aanzienlijk, en onderstreept de diepgaande implicaties ervan voor het bevorderen van mRNA-vaccins en gentherapietoepassingen.

Tegelijkertijd is het moederbedrijf Yeasen heeft ook een T7 RNAP-product gelanceerd dat dsRNA aanzienlijk vermindert inhoud. Meerdere partners hebben de gemodificeerde T7 RNAP-mutanten die door Molefuture zijn ontwikkeld al getest en het product is zeer gewaardeerd door klanten. Onze klanten geloven dat het gebruik van het nieuwe enzym het zuiveringsproces van mRNA vereenvoudigt en vermindert de immunogeniciteit van IVT aanzienlijk producten, toont uitstekende prestaties in meerdere toepassingsscenario's en bewijst hiermee zijn brede potentiële toepassing op het gebied van biofarmaceutica!

Bestel Informatie

Hieronder staan ​​representatieve producten die worden aangeboden door Yeasen. Er zijn extra maten beschikbaar. Onze producten zijn zeer geoptimaliseerd om samen te werken, om superieure prestaties en reproduceerbaarheid te helpen garanderen. We kunnen ook aangepaste services leveren. Als u geïnteresseerd bent in een product dat niet wordt weergegeven, neem dan contact met ons op en we werken met u samen om aan uw behoeften te voldoen.

Productnaam SKU Specificaties
CleaScrip™ T7 RNA-polymerase (laag ds RNA, 250 U/μL) 10628ES 10/100 KU
T7 High Yield RNA-synthesekit 10623ES 50/100/500T
T7 RNA Polymerase GMP-kwaliteit (50 U/μL) 10624ES 5000/50000 U
T7 RNA-polymerase GMP-kwaliteit (250 U/μL) 10625ES 10/100 KU
10×Transcriptiebuffer 2 GMP-kwaliteit 10670ES 1/10 ml
Pyrofosfatase, anorganisch GMP-kwaliteit 0,1 U/(μL) 10672ES 10/100/1000 U
Muizen-RNase-remmer van GMP-kwaliteit 10621ES 10/20/100 KU
BspQI GMP-kwaliteit 10664ES 500/2500 U
DNase I GMP-kwaliteit 10611ES 500/2000/10000 U
mRNA Vaccinia Capping Enzyme GMP-kwaliteit 10614ES 2000/10000/100000 U
mRNA Cap 2'-O-Methyltransferase GMP-klasse 10612ES 2000/10000/50000 U
10×Afsluitbuffer GMP-kwaliteit 10666ES 1/10 ml
S-adenosylmethionine (SAM) (32 mM) 10619ES 0.5/25/500 ml
Pseudouridine-5-trifosfaat, trinatriumzoutoplossing (100 mM) 10650ES 20 μL/100 μL/1 ml
N1-Me-Pseudo UTP natriumoplossing (100 mM) 10651ES 20 μL/100 μL/1 ml
ATP-oplossing (100 mM) 10129ES 1/25/500 ml
CTP-oplossing (100 mM) 10130ES 1/25/500 ml
UTP-oplossing (100 mM) 10131ES 1/25/500 ml
GTP-oplossing (100 mM) 10132ES 1/25/500 ml
NTP-setoplossing (ATP, CTP, UTP, GTP, elk 100 mM) 10133ES 1 set (4 flesjes)
Hieff NGS™ RNA-reiniger 12602ES 1/5/60/450 ml
ATP Tris-oplossing GMP-kwaliteit (100 mM) 10652ES 1/5/25/500ml
CTP Tris-oplossing GMP-kwaliteit (100 mM) 10653ES 1/5/25/500ml
GTP Tris-oplossing GMP-kwaliteit (100 mM) 10655ES 1/5/25/500ml
Pseudo UTP Tris-oplossing GMP-kwaliteit (100 mM) 10656ES 1/5/25/500ml
N1-Me-Pseudo UTP Tris-oplossing GMP-kwaliteit (100 mM) 10657ES 1/5/25/500ml
ARCA (Anti Reverse Cap Analoog) 10681ES 1/5/25/500ml
Dubbelstrengs RNA (dsRNA) ELISA-kit 36717ES 48T/96T

Inquiry