描述
Hieff Trans™通用转染试剂是基于最新纳米技术研发的一种多用途、便捷高效的脂质体转染试剂,适用于DNA、RNA和寡核苷酸的转染,对包括原代细胞、神经元在内的难转染细胞均具有较高的转染效率。其独特的配方使其可以直接加入培养基中,血清的存在不会影响转染效率,减少了血清去除对细胞的损伤。转染后无需去除核酸-转染试剂复合物或更换新鲜培养基,也可根据细胞的营养状况在4-6小时后更换新鲜培养基。
产品组件
部件编号 | 成分 | 猫号/尺寸 | ||
40808ES02 | 40808ES03 | 40808ES03 | ||
40808-A | 环球-A | 0.5 毫升 | 1 毫升 | 5×1毫升 |
40808-B | 通用-B | 0.5 毫升 | 1 毫升 | 5×1毫升 |
运输和储存
产品配送冰袋,2-8℃可保存一年,请勿冷冻!
注意事项
1)转染操作时,细胞汇合度达到70%-90%为佳,具体接种密度根据细胞情况确定。
2)转染复合物的制备需要在无血清培养基中稀释DNA和转染试剂。
3)转染时培养基中不能添加抗生素。
4)使用高纯度的DNA或RNA有助于获得更高的转染效率,质粒中的内毒素是转染的大敌。
5)保存于2-8℃,注意不要长时间反复打开盖子。
6)首次使用时应优化核酸浓度和试剂体积,以获得最大的转染效率。
7)本产品仅供科学研究之用!
指示
DNA 转染
【注】转染试剂使用量受细胞种类及其他实验条件影响,建议首次使用时设置梯度以优化最佳使用量。
1) 将细胞接种,转染时细胞融合度应达到70%-90%。
2) 按照下表用 Opti-MEM 培养基稀释 Universal-B 溶液,并轻轻混匀。
3) 用 Opti-MEM 培养基稀释 DNA 以获得 DNA 预混液,然后添加 Universal-A 溶液并轻轻混合以获得稀释的 DNA。
4) 将稀释的 DNA 加入稀释的 Universal-B 溶液中(比例为 1:1)。
5) 室温下孵育 5 分钟。
6) 将 DNA-脂质体复合物逐滴加入细胞中,轻轻混匀。
7) 在37°C、5%CO2培养箱中孵育48-96小时,直至进行基因表达分析。
siRNA 的转染
siRNA 的转染步骤与 DNA 转染步骤相同,只是稀释 siRNA 时不需要添加 Universal-A 溶液(步骤 3)。
表1 不同细胞培养容器的转染量(仅供参考)
细胞培养容器 | 96 孔 | 24 孔 | 6孔 | |
贴壁细胞 | 1-4×104 | 0.5-2×105 | 0.25-1×106 | |
按照下表用 Opti-MEM 培养基稀释 Universal-B 溶液并轻轻混匀。 | Opti-MEM培养基 | 5 微升 | 25 微升 | 125 微升 |
通用-B | 0.2 微升 | 1 微升 | 5 微升 | |
用 Opti-MEM 培养基稀释 DNA 以获得 DNA 预混物,然后添加 Universal-A 溶液并轻轻混合以获得稀释的 DNA。 | Opti-MEM培养基 | 5 微升 | 25 微升 | 125 微升 |
DNA(0.5~5 μg/μL) | 0.1微克 | 0.5微克 | 2.5微克 | |
通用-A(2 μL/μg DNA) | 0.2 微升 | 1 微升 | 5 微升 | |
将稀释的 DNA 加入稀释的 Universal-B 溶液中(比例为 1:1)。 | 稀释 DNA 溶液 | 5 微升 | 25 微升 | 125 微升 |
通用-B | 5 微升 | 25 微升 | 125 微升 | |
室温下孵育 5 分钟。 | ||||
DNA-脂质体复合物 | 部件(每孔) | 96 孔 | 24 孔 | 6孔 |
优化MEM | 10 μL | 50 μL | 250 微升 | |
DNA(0.5~5微克/微升) | 0.1微克 | 0.5微克 | 2.5微克 | |
通用-B | 0.2 微升 | 1 微升 | 5 微升 | |
环球-A | 0.2 微升 | 1 微升 | 5 微升 | |
将 DNA-脂质体复合物逐滴加入细胞中并轻轻混匀。 | DNA-脂质体复合物 | 10 μL | 50 μL | 250 微升 |
【注】表中用量仅供参考,具体DNA与Universal-B溶液用量需根据细胞种类及其他实验条件优化,建议比例保持在1:0.5-1:5之间。
(1)问:制备核酸转染试剂复合物时可以存在血清吗?
A:血清的存在会影响脂质体的形成,建议在制备核酸转染试剂复合物时使用无血清培养基(一般为MEM培养基)。
(2)问:转染试剂可以冷冻吗?
答:本试剂需保存于2-8℃,且应避免反复、长时间开盖,长期开盖会导致脂质体氧化,影响转染效率。
(3)问:使用Hieff Trans™通用转染试剂时应注意什么?
A:1)转染操作时,细胞汇合度达到70%-90%为佳,具体接种密度根据细胞情况决定。
2)转染复合物的制备需要在无血清培养基中稀释DNA和转染试剂。
3)转染时培养基中不能添加抗生素。
4)使用高纯度的DNA或RNA有助于获得更高的转染效率,质粒中的内毒素是转染的大敌。
5)保存于2-8℃,注意不要长时间反复打开盖子。
6)首次使用时应优化核酸浓度和试剂体积,以获得最高的转染效率。
(4)转染后需要终止吗?
A:不需要。转染后无需除去核酸-转染试剂复合物或更换新鲜培养基,也可根据细胞的营养状况在4-6小时后更换新鲜培养基。
(5)转染试剂可以用于病毒载体包装的转染吗?
答:是的。病毒载体包装效率与转染效率并不一定相关,还与包装质粒的选择以及质粒之间的配比有关。
付款和安全
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