----背景清晰，條帶形態穩定，尺寸精確
DNA 標記是不同分子量的 DNA 片段的組合。它們的主要用途是在瓊脂糖凝膠電泳中與樣本 DNA 一起遷移以分離 DNA 分子。透過比較樣品條帶的大小和亮度與 DNA Marker 的條帶，可以粗略地估計溶液中樣品 DNA 的分子量和濃度。
產品特性
- 穩定性強，常溫下可保存3-6個月；
- 背景清晰、條帶形態穩定、尺寸精確；
- 含有已知濃度的參考帶，方便定位和半定量分析；
- 含上樣緩衝液，可直接電泳，方便快速；
- 附5×上樣緩衝液，用於上樣。
電泳圖
注意事項
- 儲藏方式：常溫穩定保存3~6個月；如需長期保存，請儲存在 4°C 或 -20°C 下。
- DNA Marker 適用於分析瓊脂糖凝膠電泳中的 DNA 帶，不建議用於聚丙烯醯胺凝膠電泳。
- 凝膠濃度及緩衝溶液的選擇：
| 瓊脂糖濃度 | 有效分離範圍 (bp) | 推薦緩衝液 |
| 0.5％ | 2,000-50,000 | 1×TAE |
| 0.8％ | 800-10,000 | 1×TAE |
| 1.0％ | 400-8,000 | 1×TAE |
| 1.2％ | 300-7,000 | 1×TAE |
| 1.5％ | 200-3,000 | 1×TAE/0.5×TBE |
| 2.0％ | 100-2,000 | 1×TAE/0.5×TBE |
| 3.0％ | 25-1,000 | 0.5×TBE |
【注意】：對於大片段，請選擇低濃度凝膠並使用TAE緩衝體系進行電泳；對於小片段，選擇高濃度凝膠並使用TBE緩衝系統進行電泳。
- 核酸染料的選擇：
EB（溴化乙錠）是一種高靈敏度的螢光染料，最大激發波長為302nm，可用於觀察瓊脂糖和聚丙烯醯胺凝膠中的核酸。 EB 會插入核酸中的鹼基中，並且具有毒性。
YeaRed（Cat#10202ES76）和YeaGreen（Cat#10204ES76）是新型無毒核酸染料，具有獨特的油性分子結構，無法穿透細胞膜進入細胞，不易揮發和昇華，因而不會被人體吸入，保證了實驗者的安全。Ames試驗結果也表明，YeaRed和YeaGreen在凝膠染色濃度下不具有致突變性，是高致癌性EB的安全無毒替代品。此外，YeaRed具有與EB相同的光譜特性，因此可以在不改變現有成像系統的情況下完美取代EB。
問答
Q1: 為什麼DNA Marker的高分子量條帶會拖沓，分離不好？
A1：核酸染料與 DNA Marker 結合不夠。由於高分子量條帶需要更多的核酸染料，如果染料未飽和，高分子量條帶更容易受到遷移效應的影響，導致拖曳和分離不良。建議減少DNA Marker的使用量（可用水稀釋5倍後再上樣8-10μL）或提高核酸染料的濃度。
Q2：為什麼 DNA 沒有條帶或條帶很弱？
答案2:
- DNA上樣量不足，增加上樣量；
- DNA 帶已從凝膠中流出；
- DNA 帶被示蹤染料遮蔽；
- 凝膠中未添加核酸染料；
- 瓊脂糖凝膠放置時間過長，建議立即準備使用。
Q3: 為什麼DNA Marker帶是彌散的？
答案3:
- DNA部分降解，檢查儲存條件是否過熱；
- 電泳時電壓太低，造成DNA條帶擴散。建議在 110V-130 下運行凝膠 五 超過45分鐘；
- 瓊脂糖凝膠濃度不合適，依說明書建議凝膠濃度製備；
- 瓊脂糖凝膠品質差，建議重新製備瓊脂糖凝膠。
問題 4：為什麼樣本條帶與 DNA Marker 條帶相比大小不同？
A4：
- DNA的遷移不僅與實際尺寸有關，也與是否與蛋白質、離子狀態、DNA結構、凝膠等因素結合有關。核酸的電泳遷移率與DNA/染料的配比有關，當核酸染料的量不足時，會導致較大的遷移率誤差；
- 如果樣品中含有較高濃度的鹽離子，也會造成明顯的遷移誤差；
- 如果上樣樣本的量與 DNA Marker 帶的數量有顯著差異或體積有顯著差異，也會導致更大的遷移誤差。
訂購資訊
| 產品定位 | 產品名稱 | 產品編號 | 規格 |
| DNA 標記 | GoldBand DL2000 DNA 標記 | 10501ES60/80 | 100 噸/10×100噸 |
| GoldBand DL5000 DNA 標記 | 10504ES60/80 | 100 噸/10×100噸 | |
| GoldBand 100bp DNA 梯狀圖 | 10507ES60/80 | 100 噸/10×100噸 | |
| GoldBand 1 kb DNA 梯狀圖 | 10510ES60/80 | 100 噸/10×100噸 |