Alto NGS^MT. El kit de preparación de biblioteca de ADN es un kit de construcción de bibliotecas de nueva generación especialmente desarrollado y diseñado para Ilumina® &MGI® plataforma de secuenciación. Basado en la generación anterior del kit de construcción de bibliotecas, este producto exhibe una mayor eficiencia en la reparación de extremos, la unión de dA y la ligadura de adaptadores que las versiones anteriores. La enzima de alta fidelidad mejora significativamente la uniformidad y fidelidad de la amplificación. El kit es compatible con la mayoría de los tipos de muestras de ADN, incluido el ADN genómico estándar de animales/plantas/microorganismos, muestras FFPE, cfDNA y ChIP DNA.

Presupuesto

Componentes

Almacenamiento

Este producto debe almacenarse a -25~-15℃ durante 1 año.

Notas

1. Sobre la operación

1Por su seguridad, utilice bata de laboratorio y guantes desechables.

2. Descongele los componentes a temperatura ambiente. Después de descongelar, mezclar bien mediante vórtex, girar el tubo brevemente y colocarlo en hielo para su uso posterior.

3. Al preparar la solución de reacción de cada paso, se recomienda utilizar una pipeta para mezclar bien o agitar suavemente. Una agitación vigorosa puede provocar una disminución en la producción de la biblioteca.

4. Se recomienda encarecidamente utilizar puntas de pipeta con filtro para evitar la contaminación cruzada. Asegúrese de cambiar las puntas de pipeta cuando procese distintas muestras.

5. Es muy probable que las operaciones inadecuadas provoquen contaminaciones por aerosoles, lo que afectará la precisión del resultado. Se recomienda el aislamiento físico obligatorio de las regiones de mezcla de la reacción de PCR y de las regiones de ensayo de purificación del producto de PCR. Equipado con equipos como pipetas especializadas para la construcción de bibliotecas.Realice una limpieza de rutina para cada área limpiando las superficies con hipoclorito de sodio al 0,5% o blanqueador al 10%.

6Este producto es solo para uso de investigación.

2. Fragmentación del ADN

1. Este kit es compatible con ADN fragmentado mecánicamente o enzimáticamente.

2. El kit es compatible con 100 pg - 1000 ng de ADN de entrada. Se recomienda encarecidamente utilizar ADN de entrada de alta calidad con A260/A280 = 1,8-2,0. La Tabla 1 enumera la cantidad recomendada de ADN de entrada.

Tabla 1 Cantidad recomendada de ADN de entrada

Nota:Cuando el ADN de entrada es de mala calidad o se requiere seleccionar el tamaño del ADN, la cantidad de ADN de entrada debe aumentarse en consecuencia.

3.“ADN de entrada” se refiere específicamente a las muestras de ADN listas para reparación final/eliminación de dA.

4. Se recomienda un paso de purificación de perlas/selección de tamaño después de la fragmentación si la muestra de ADN de entrada contiene altas concentraciones de sales como el agente quelante de metales. Las sales pueden afectar la eficiencia de las siguientes reacciones, incluidas la reparación de extremos y la formación de colas de dA. Eluya las muestras de ADN en tampón TE en lugar de agua ultrapura esterilizada para la fragmentación si utiliza el método de fragmentación mecánica. Si utiliza el método de fragmentación enzimática sin realizar la limpieza de perlas o la selección de tamaño antes de proceder a la preparación de la biblioteca, asegúrese de que el tampón de detención utilizado no contenga una cantidad excesiva de agente quelante de metales. De lo contrario, limpie o seleccione el tamaño de las muestras fragmentadas y elúyalas en tampón TE o agua ultrapura esterilizada (≤50 μL) antes de proceder a la preparación de la biblioteca.

3. Ligadura del adaptador

1. Los kits de adaptador largo (adaptador con código de barras) Illumina o MGI y los kits de adaptador corto están disponibles para que los clientes elijan según sus requisitos experimentales.

2. Se recomienda seleccionar adaptadores comerciales de alta calidad. Si se seleccionan adaptadores de fabricación propia, confíe en una empresa con experiencia en la síntesis de cebadores NGS y remarque la necesidad de un control estricto de la contaminación. Además, se recomienda preparar la solución de hibridación de ADN en una mesa limpia y utilizar solo un tipo de adaptador cada vez para evitar la contaminación cruzada..

3. Descongele los adaptadores en hielo o a 4 °C; cuando se opera a temperatura ambiente, la temperatura del laboratorio no debe superar los 25 °C para evitar que los adaptadores se desnaturalicen.

4. La calidad y concentración de los adaptadores afectarán directamente la eficiencia de la ligadura y el rendimiento de la biblioteca. Una concentración demasiado alta de adaptadores favorece la formación de dímeros de adaptadores, mientras que una concentración demasiado baja de adaptadores reduce la tasa de ligadura y el rendimiento de la biblioteca. Diluciones correspondientes con tampón TE según la cantidad de ADN de entrada cuando se utiliza el adaptador. Tabla 2 -5 enumera los métodos de dilución del adaptador recomendados para diferentes cantidades de ADN de entrada utilizando este kit.

Mesa 2 El Illumina recomendado^MT. Cantidad de adaptadores para diferentes entradas ADN

Mesa 3 El MGI recomendado^MT. Cantidad de adaptadores para diferentes entradas ADN

Mesa 4 El Illumina recomendado^MT. UMI Cantidad de adaptadores para diferentes entradas ADN

Mesa 5 El MGI recomendado^MT. UMI adaptador ametrorecuento para diferentes entradas ADN

4. Limpieza y selección de tamaño de ADN con microesferas

1. La selección del tamaño del ADN se puede realizar antes de la reparación final/cola de dA, después de la ligadura del adaptador o después de la amplificación.

2. Se recomienda realizar la selección de tamaño inmediatamente después de la ligadura del adaptador si la cantidad de ADN de entrada es superior a 50 ng.; De lo contrario, realice la selección de tamaño después de la amplificación.

3. El potenciador de ligadura contiene una alta concentración de PEG, lo que puede causar un impacto significativo en la selección precisa del tamaño. Por lo tanto, si la selección del tamaño se va a realizar inmediatamente después de la ligadura del adaptador, se recomienda encarecidamente agregar un paso de limpieza de perlas antes de la selección del tamaño. El paso de selección del tamaño se puede realizar directamente si se realiza antes de la reparación final/cola de dA o después La amplificación de la biblioteca.

4. Las perlas magnéticas deben equilibrarse a temperatura ambiente antes de su uso, de lo contrario, el rendimiento disminuirá y el efecto de selección de tamaño se verá afectado.

5. Las perlas magnéticas deben mezclarse bien mediante vórtex o pipeteo antes de su uso.

6. No aspire las perlas al transferir el sobrenadante; incluso trazas de perlas pueden afectar las siguientes reacciones.

7. El etanol al 80% debe prepararse recién, de lo contrario afectará la eficiencia de recuperación.

8. Para una selección precisa del tamaño, se recomienda comenzar con un volumen de más de 100 μL. Si es menor, se recomienda aumentar el volumen hasta 100 μL con agua ultrapura.

9. Las perlas magnéticas deben secarse a temperatura ambiente antes de eluir el producto. Una sequedad insuficiente puede provocar que los residuos de etanol afecten fácilmente las reacciones posteriores; una sequedad excesiva puede provocar que las perlas magnéticas se agrieten y reduzcan el rendimiento de la purificación. Normalmente, un secado a temperatura ambiente durante 3 a 5 minutos es suficiente para permitir que las perlas se sequen por completo.

10. Si es necesario, las muestras de ADN purificadas o de tamaño seleccionado se eluyen en 0,1× El tampón TE se puede almacenar a 4 °C durante 1-2 semanas o a -20 °C durante un mes.

5. Amplificación de la biblioteca

1. La realización o no de la amplificación de la biblioteca depende de la cantidad de ADN de entrada, los tipos de adaptadores, las aplicaciones de los datos de secuenciación, etc. El paso de amplificación es necesario si se utilizan adaptadores parciales. Cuando se utilizan adaptadores de longitud completa, si el ADN de entrada es <200 ng, se recomienda realizar la amplificación; de lo contrario, no es necesaria.

2. La cantidad de ciclos de amplificación debe controlarse estrictamente. Una amplificación insuficiente puede generar un bajo rendimiento de la biblioteca; la sobreamplificación puede generar mayor sesgo, errores, lecturas duplicadas y productos quiméricos. Tabla 6 enumera los números de ciclos recomendados que apuntan al rendimiento de la biblioteca de 1 μg.

Mesa 6 El número recomendado de ciclos para generar 1.000 ng de rendimiento de la biblioteca

Nota:

1.Mesa 6 muestra la cantidad de parámetros de bucle utilizando pruebas de ADN de entrada de alta calidad de alrededor de 200 pb. La calidad del ADN FFPE varía mucho y, cuando la calidad del ADN es deficiente o la longitud de la biblioteca es larga, es necesario aumentar adecuadamente la cantidad de ciclos para obtener bibliotecas suficientes.

2.ISi se requiere la selección del tamaño durante el proceso de construcción de la biblioteca, se recomienda un número de ciclo más alto para la amplificación de la biblioteca; de lo contrario, se recomienda un número de ciclo más bajo.

3.ISi se utilizan adaptadores incompletos, es necesario amplificar al menos 2 ciclos para formar un adaptador completo.

6. Análisis de calidad de la biblioteca

1. La calidad de las bibliotecas construidas generalmente se analiza midiendo las concentraciones y distribuciones de tamaño.

2. Bibliotecas'Las concentraciones se pueden medir mediante métodos basados ​​en fluorescencia como Qubit y PicoGreen o qPCR.

3.NO se recomienda utilizar métodos de cuantificación basados ​​en absorbancia como NanoDrop.

4. Se recomienda utilizar el método qPCR para cuantificar las bibliotecas: los métodos basados ​​en fluorescencia como Qubit y PicoGreen no pueden diferenciar las estructuras de dsADN incompletas (insertos sin adaptador o con solo uno de los extremos ligado con adaptador) de las bibliotecas completas. El método qPCR solo amplificará y medirá las bibliotecas completas con ambos extremos ligados con adaptadores (las bibliotecas secuenciables), lo que proporciona una medición más precisa para la carga.

5. La distribución del tamaño de las bibliotecas se puede analizar utilizando Agilent Bioanalyzer u otros dispositivos basados ​​en los principios de electroforesis capilar o microfluídica.

7. Otros materiales

1. Perlas magnéticas para purificación de ADN: Hieff NGS^MT. Perlas de selección de ADN (Yeasen Cat. n.° 12601) o AMPure^® XP Beads (A63880) u otros productos equivalentes.

2. Adaptadores: Adaptador completo para Illumina: Yeasen Cat#13519-13520; 384 Cebadores CDI dobles:Yeasen Gato n.° 12412 ~ Gato n.° 12413; 384 cebadores de índice dual único (UDI): Yeasen Gato n.° 12312~Gato #12315; Adaptadores UMI UDI:Yeasen Gato n.° 13370 ~ Gato n.° 13371; Adaptador completo para MGI: Yeasen Cat#13360-13362. Mezcla de cebadores de ADN:Gato#12190 o Gato#12191.

3. Análisis de calidad de la biblioteca: Agilent 2100 Bioanalyzer DNA 1000 Chip/High Sensitivity Chip u otros productos equivalentes; reactivos cuantitativos de biblioteca.

4. Otros materiales: etanol absoluto, agua ultrapura estéril, puntas de pipeta de baja retención, tubo de PCR, soportes magnéticos, termociclador, etc.

Instrucciones

Paso 1. Reparación final/dA-Taling

1. Deshielo los reactivos mencionados en la Tabla 7 Invierta para mezclar bien los reactivos y colóquelos en hielo para su uso posterior.

2. Reúna los reactivos según la Tabla 7 con hielo.

Mesa 7 Sistema de reacción de reparación de extremos/dA-Tailing

3. Mezcle suavemente pipeteando o agitando. Centrifugue brevemente para obtener la solución.

4. Coloque el tubo en un termociclador y configure el programa según la tabla 8.

Mesa 8 Reparación de extremos/dA-Tailing programa de reacción

Paso 2. Ligadura del adaptador

1. Diluir el adaptador a la concentración adecuada según la Tabla 2-5.

2. Deshielo los reactivos mencionados en la Tabla 9 Invierta para mezclar bien los reactivos y colóquelos en hielo para su uso posterior.

3. Reúna los reactivos según la Tabla 9 con hielo.

Mesa 9 Ligadura del adaptador resistema de acción

Nota: *El potenciador de ligadura es viscoso. Mezcle bien invirtiendo o volteando y centrifugar brevemente antes de usar.

**La concentración original de la Ilumina^MT. El adaptador de YEASE es de 15 μM. Diluya el adaptador según la cantidad de entrada. y fijar el volumen del adaptador en 5 μL.

**La concentración original de la MGI^MT. El adaptador de YEASE es 10 μM. Diluya el adaptador según la cantidad de entrada. y fijar el volumen del adaptador en 5 μL.

4. Mezcle bien pipeteando suavemente hacia arriba y hacia abajo y centrifugue brevemente para recoger todo el líquido de los lados del tubo..

5. Incubar la muestra en un termociclador precalentado como se muestra en la Tabla 10 y realizar la reacción de conexión del adaptador.

Mesa 10 Programa de reacción de ligación de adaptadores

Paso 3. Limpieza o selección de tamaño después de la ligadura del adaptador

Este paso es para purificar o seleccionar el tamaño del producto en el paso 2 Con perlas magnéticas. La purificación puede eliminar residuos de adaptadores, dímeros de adaptadores u otros productos inutilizables.

Limpiarnorte compuesto de ADN ligado al adaptador

1. Preparación: tomar la prueba Hieff NGS^MT. Saque las perlas de selección de ADN del refrigerador y déjelas a temperatura ambiente durante al menos 30 minutos. Prepare etanol al 80 % recién extraído.

2. Mezcle bien las perlas invirtiéndolas o colocándolas en vértices.

3. Agregar 88 microlitros Alto NGS^MT. Perlas de selección de ADN (0.8×, Cuentas: ADN = 0.8:1) al tubo que contiene el producto ligado al adaptador, agite y mezcle bien e incube a temperatura ambiente durante 5 minutos.

4. Centrifugue brevemente para que la solución baje y coloque el tubo de centrífuga en el soporte magnético. Una vez que las perlas magnéticas se hayan absorbido por completo (aproximadamente 5 minutos), retire el líquido con cuidado.

5. Mantenga el tubo en el soporte magnético, Añada directamente al tubo 200 μL de etanol al 80 % recién preparado. Incube a temperatura ambiente durante 30 segundos y retire el líquido con cuidado.

6. Repetir Paso 5 de nuevo.

7. Mantenga el tubo en el soporte magnético, abra la tapa y seque las cuentas hasta que estén apenas agrietadas (no más de 5 minutos).

8. Retire el tubo del soporte magnético para la elución. y eluir el ADN

1). Si no es necesario seleccionar el tamaño del producto, agregue 21 μL de ddH₂O directamente. Mezcle bien agitando con un vórtex o pipeteando hacia arriba y hacia abajo 10 veces. Incube a temperatura ambiente durante 5 minutos. Gire el tubo brevemente y colóquelo en un soporte magnético. Cuando la solución esté transparente (aproximadamente 5 minutos), transfiera 20 μL de sobrenadante a un nuevo tubo de PCR con cuidado sin tocar las perlas magnéticas.

2). Si es necesario seleccionar el tamaño del producto, agregue 102 μL de ddH₂O directamente. Mezcle bien agitando con un vórtex o pipeteando hacia arriba y hacia abajo 10 veces. Incube a temperatura ambiente durante 5 minutos. Gire el tubo brevemente y colóquelo en un soporte magnético. Cuando la solución esté transparente (aproximadamente 5 minutos), transfiera 100 μL de sobrenadante a un nuevo tubo de PCR con cuidado sin tocar las perlas magnéticas.

Nota:Si es necesario almacenar el producto purificado, se puede eluir con tampón TE.

Selección del tamaño del ADN ligado al adaptador

1.Preparación: tomar la prueba Hieff NGS^MT. Saque las perlas de selección de ADN del refrigerador y déjelas a temperatura ambiente durante al menos 30 minutos. Prepare etanol al 80 % recién extraído.

2. Mezcle bien las perlas invirtiéndolas o colocándolas en vértices.

3. En función de los tamaños deseados, agregue la primera ronda de perlas a las plantillas de ADN purificadas de 100 μL de acuerdo con la Tabla 11Mezcle bien agitando en un vórtex o pipeteando 10 veces.

Mesa 11 Relación perlas-ADN recomendada para la selección del tamaño de perlas

Nota: "×" en la tabla indica el volumen de la muestra de ADN. Por ejemplo, si la longitud del inserto de la biblioteca es de 250 pb y el volumen de ADN de la muestra es de 100 μL, el volumen de perlas magnéticas utilizado en la primera ronda de clasificación es de 0,7×100 μL=70 μL; el volumen de perlas magnéticas utilizado en la segunda ronda de clasificación es de 0,20×100 μL=20 μL. El volumen de perlas recomendado en la tabla es para el ADN ligado al adaptador. Si el procedimiento de selección de tamaño se realiza antes de la ligadura, consulte los protocolos de fabricación de Hieff NGS^MT. Perlas de selección de ADN (Cat. n.° 12601).

4. IIncubar a temperatura ambiente durante 5 minutos.

5. Gire el tubo brevemente y colóquelo sobre un soporte magnético. Cuando la solución esté transparente (aproximadamente 5 minutos), transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo de PCR.

6. Añade la segunda ronda de cuentas de selección a la muestra del paso 5 según la tabla 11.Mezcle bien agitando o pipeteando hacia arriba y hacia abajo al menos 10 veces.

7. IIncubar a temperatura ambiente durante 5 minutos.

8. Centrifugue brevemente para que la solución baje y coloque el tubo de centrífuga en el soporte magnético. Una vez que las perlas magnéticas se hayan absorbido por completo (aproximadamente 5 minutos), retire el líquido con cuidado.

9. Mantenga el tubo en el soporte magnético, Añada directamente al tubo 200 μL de etanol al 80 % recién preparado. Incube a temperatura ambiente durante 30 segundos y retire el líquido con cuidado.

10. Repetir paso 9 de nuevo.

11. Mantenga el tubo en el soporte magnético, abra la tapa y seque las cuentas hasta que estén apenas agrietadas (no más de 5 minutos).

12. Retire el tubo del soporte magnético para la elución., y añadir directamente 21 μL de ddH₂O. Mezcle bien agitando con un vórtex o pipeteando de arriba a abajo e incube a temperatura ambiente durante 5 minutos. (Nota: si necesita almacenar el producto purificado, eluya en tampón TE). Centrifugue brevemente el tubo y colóquelo en un soporte magnético hasta que el líquido se vuelva transparente (aproximadamente 5 minutos). Transfiera con cuidado 20 μL de sobrenadante a un nuevo tubo de PCR sin tocar las perlas.

Paso 4 Amplificación de la biblioteca

Este paso puede enriquecer los productos purificados o de tamaño seleccionado mediante amplificación por PCR.

1. Descongele la lista de reactivos en la tabla 12, invierta y mezcle bien, y colóquelos en hielo para usarlos más tarde.

2. Reúna la siguiente reacción en un tubo de PCR esterilizado.

Mesa 12 reacción de PCR de ADN ligado al adaptador sistema

[Nota]: * si se utilizó el adaptador completo, Alto NGS^MT. Mezcla de imprimación (Gato Yeasen #12190 o Cat#12191) En necesidad; Si se utiliza un adaptador incompleto (Cat#12412~Cat#12413, Cat#12312~Gato #12315, Cat#13370~Cat#13371), consulte las instrucciones del kit y utilice el cebador de índice provisto en el kit para la amplificación.

3. Mezcle suavemente pipeteando o agitando y centrifugue brevemente para obtener la solución.

4. Coloque el tubo en un termociclador y configure el programa según la tabla 13 Para iniciar la amplificación.

Mesa 13 Programa de reacción de amplificación por PCR

Paso 5 Limpieza posterior a la amplificación/selección de tamaño

El limpio Los pasos hacia arriba se refieren a paso 3. NGS de alto rendimiento^MT. Las perlas de selección de ADN (0,9×, perlas: ADN = 0,9:1) se utilizan para purificar el producto de PCR. Si es necesario seleccionar el tamaño, consulte paso 3.

Paso 6 Control de calidad de las bibliotecas finales

La calidad de la biblioteca construida se evalúa generalmente midiendo la concentración y la distribución del tamaño. Para obtener más detalles, consulte la Nota 6.