Les macrophages jouent des rôles uniques et essentiels dans différentes parties du corps. Cependant, l'élimination précise des macrophages est devenue un outil de recherche essentiel pour mieux étudier les fonctions spécifiques des macrophages dans des zones spécifiques et leur impact sur le développement de la maladie. Les liposomes de clodronate sont l'un des outils les plus éprouvés, les plus rentables et les plus idéaux pour l'élimination des macrophages. Les liposomes de clodronate peuvent être administrés par voie intrapéritonéale, dans la veine de la queue et de diverses autres manières pour éliminer les macrophages de différents tissus.
Dans ce qui suit, nous partagerons une série de sujets pour démontrer les méthodes et l’efficacité de l’élimination des macrophages sur différents sites, dans l’espoir de fournir des références et des références utiles aux chercheurs.
Introduction aux méthodes d'injection
Injection dans la veine de la queue
L'injection dans la veine de la queue atteint son épuisement maximal après 24 h. Une attention particulière doit être portée au moment de la détection.
1. Placez les souris dans une boîte à lunch inversée, retirez la queue de l'orifice, il y a deux artères et trois veines dans la queue des souris, deux les artères se trouvent sur les côtés dorsal et ventral de la queue, et les trois les veines sont réparties en zigzag, généralement les côtés gauche et droit des veines sont utilisés ;
2. Faites tremper la gaze dans de l'eau tiède à environ 70 ℃ (ou faites-la tremper dans de l'alcool), retirez-la et enveloppez la queue, afin d'atteindre l'objectif de vasodilatation de la queue et de ramollir la kératine épidermique ;
3. Pour l'injection intraveineuse de la queue, avec le pouce et l'index gauches avant et après avoir maintenu la queue du rat, en laissant une section d'environ 2 cm, de sorte que la peau soit tendue, les veines soient plus pleines, la main droite tenant une seringue à aiguille de 1 ml, de sorte que l'aiguille et la veine soient parallèles (angle inférieur à 30 °), du quart inférieur de la queue dans l'aiguille, le début de l'injection du médicament doit être lent, observation attentive, s'il n'y a pas de résistance, aucun dermatome blanc n'apparaît, cela signifie que les vaisseaux sanguins ont été percés et peuvent être Injection formelle de médicaments.
4. Certaines expériences nécessitent des injections répétées dans la veine de la queue pendant plusieurs jours. Le site d'injection doit commencer à partir de l'extrémité de la queue aussi loin que possible, puis se déplacer vers la racine de la queue en séquence et modifier la position vasculaire pour l'injection. Après avoir retiré l'aiguille, appuyez sur le site d'injection avec une boule de coton pendant 1 - 2 minutes pour arrêter le saignement.
Injection intrapéritonéale
L'injection intrapéritonéale atteint son épuisement maximal après 48 - 72 h. Il convient de prêter attention à la détection des points temporels.
1. Tout d'abord, utilisez la méthode de l'écope dorsale pour attraper les souris, de sorte que leur tête soit légèrement inclinée vers l'arrière et leur abdomen vers le haut, le membre postérieur gauche des souris est fixé avec le petit doigt, puis le site d'injection est stérilisé avec un coton imbibé d'alcool à 75 %.
2、L'emplacement de l'injection intrapéritonéale chez la souris est de 0,5 cm de chaque côté de la ligne médiane du bas-ventre (au ras de la racine de la cuisse). Afin d'éviter de blesser les organes, la tête de la souris doit être inclinée vers l'arrière lors de la mise en liberté de la souris, de manière à faire remonter les organes du bas-ventre.
3、Piquez l'aiguille de la seringue dans la peau, entrez dans la zone sous-cutanée, poussez l'aiguille vers l'avant le long de la zone sous-cutanée pendant 2 - 3 mm, puis percer la cavité abdominale de la souris à un angle de 45 degrés entre l'aiguille et la peau. Remarque : après avoir pénétré le péritoine, la résistance de la pointe de l'aiguille disparaît.
4. Retirez le bouchon de l'aiguille. S'il n'y a pas de retour de sang ou de liquide, le médicament peut être injecté.
5. Après l'injection, faites tourner doucement l'aiguille, puis retirez lentement la seringue pour éviter toute fuite de liquide.
Il existe également différentes méthodes d'injection pour différents sites d'étude, telles que : l'injection sous-cutanée, l'administration trachéale, l'injection intracrânienne, etc. Vous devez vous référer à la littérature pertinente et consulter l'équipe technique de Yeasen avant l'expérimentation.
Cycle de dosage et dosage
Administration à court terme : une seule injection de liposomes chlorophosphate 200 µL (20 - 25 g de poids) à un moment précis pour détecter l'efficacité de l'élimination des macrophages ou pour des expériences en aval.
Administration à long terme : il faut plus d'une semaine ou plus pour obtenir l'élimination des macrophages. Chez les souris WT, par exemple, 200 µL (20 - 25 g de poids) sont généralement administrés comme première dose, suivis de 200 µL tous les 2 à 3 jours.
Protocole de test de référence
| Organe/Macrophage | Dosage (20-25g/souris) |
| Macrophages de la rate/pulpe rouge | Dose unique : 200 µL/souris (IV ou IP). |
| Cellules hépatiques/Kuffer | Dose unique : 200 µL/souris (IV ou IP). |
| Macrophages pulmonaires/alvéolaires | La voie IV (150-200 µL) combinée à la voie intratrachéale ou intranasale (50 µL) donne les meilleurs résultats. |
| ganglion lymphatique | Injection (100-200 µL)/souris, des schémas posologiques spécifiques peuvent être trouvés dans la littérature. |
| Cerveau/microglie | Entrée intracérébroventriculaire dans le liquide céphalo-rachidien, 10 µL/souris, 50 µL/rat. |
| Sang/Monocytes | 150-200 µL/souris (IV), le taux d'épuisement maximal est atteint dans les 24 heures, mais le taux d'épuisement maximal à 1 à 7 jours dépend de la souche. |
Remarque : ce qui précède est fourni à titre de référence uniquement. Veuillez vous référer à la documentation pertinente et consulter l'équipe technique de Yeasen avant l'expérimentation.
Recommandation de produit
| Nom du produit | Numéro d'article | Spécification |
| Liposomes de clodronate (de la Vrije Universiteit Amsterdam) | 40337ES08 | 5 ml |
| 40337ES10 | 10 ml | |
| 40338ES08 | 5 ml | |
| 40338ES10 | 10 ml |