Negli ultimi anni, i farmaci basati sull'mRNA hanno suscitato notevole attenzione e attirato l'attenzione della ricerca. T7 RNAP è noto per la sua semplicità e capacità di catalizzare la sintesi di RNA con elevata resa e fedeltà in vitro. Tuttavia, durante il processo di trascrizione, T7 RNAP può produrre sottoprodotti quali RNA corti abortivi, RNA prematuramente terminati e RNA 3'-estesi, che creano condizioni favorevoli per la formazione di dsRNA. Pertanto, ridurre la produzione di dsRNA è diventata un'esigenza urgente nelle applicazioni pratiche.

Di recente, uno studio pionieristico intitolato "FADS e il design semi-razionale hanno modificato la RNA polimerasi T7 riducendo la produzione di dsRNA, con attività di transferasi terminale inferiore e RDRP" è stato pubblicato online da Yeasen e dal Molefuture Team. I ricercatori hanno progettato con successo T7 RNAP per ridurre significativamente la produzione di sottoprodotti dsRNA durante la trascrizione, riducendola all'1,8% dell'enzima di tipo selvatico attraverso una combinazione di evoluzione diretta e progettazione semi-razionale.

Screening basato su FADS di T7 RNAP

Per lo screening di T7 RNAP, è stato scelto FADS (Fluorescence-activated droplet sorting) per soddisfare i requisiti di elevata produttività dell'evoluzione proteica. Per prevenire la frammentazione prematura delle cellule, i ricercatori hanno utilizzato un chip PDMS con doppie fasi acquose, in cui il lisozima è stato miscelato con le cellule sul chip ed esercitato la sua attività all'interno delle goccioline Figura 1I ricercatori hanno generato diverse librerie mutanti casuali con una diversità che va da 105 a106Dopo lo screening, sono state identificate 10 varianti dominanti e designate come Mut1 a Mut10.  Come mostrato in Figura 2E E Figura 2F, il contenuto di dsRNA di Mut1, Mut7 e Mut9 era significativamente inferiore a quello del tipo selvatico

Figura 1. Panoramica dei FADS

Figura 2. Screening casuale delle librerie e valutazione delle varianti

Progettazione semi-razionale di T7 RNAP

Ricercatori ha condotto un'esplorazione di progettazione semi-razionale, ha creato dieci librerie sature a sito singolo e ha utilizzato il tradizionale metodo a doppia sonda basato su piastra microtiter per lo screening (Figura 3). La sonda aggiunta all'estremità 5' viene utilizzata per il rilevamento della resa di RNA.

Figura 3. Progettazione semi-razionale guidata dalla struttura per dsRNA ridotto

Dopo aver esaminato oltre 1000 mutanti, i ricercatori ha identificato sei candidati: Mut11 (K180E), Mut12 (S228F), Mut13 (G238L), Mut14 (A70Q), Mut15 (A383H) e Mut16 (I743L). La resa totale di RNA di tutti e sei i mutanti non differiva significativamente dal tipo selvatico, indicando un'efficienza di trascrizione complessiva comparabile. Come previsto, il contenuto di dsRNA di Mut11 e Mut14 era significativamente inferiore rispetto al tipo selvatico(Figura 4).

Figura 4. Screening della piastra microtiter e valutazione delle varianti

Mut17 dal rimescolamento del DNA produce meno dsRNA

Per ottimizzare ulteriormente il T7 RNAP, sono state selezionate quattro varianti con basso contenuto di dsRNA, ma che soddisfacevano al contempo i requisiti di produzione.I ricercatori hanno quindi costruito una libreria di DNA shuffling e, dopo averla esaminata con piastre di microtitolazione, hanno identificato una variante che mostrava una produzione di dsRNA inferiore rispetto al suo RNAP T7 parentale, denominato Mut17 (A70Q/F162S/K180E). Hanno quindi analizzato i prodotti trascrizionali di Mut17 e delle sue varianti parentali (Mut14, Mut11 e Mut7). Come mostrato in Figura 5, tutte e quattro le varianti hanno mostrato significative riduzioni nella produzione di dsRNA durante la trascrizione rispetto al tipo selvatico. Sorprendentemente, Mut17 ha mostrato un contenuto di dsRNA significativamente inferiore di solo l'1,80% e di appena 0,007 ng/μg nel sistema solvente di screening.

Figura 5. Contenuto di dsRNA di Mut17 e delle sue mutazioni parentali

L'immunogenicità del prodotto IVT del mutante è significativamente inferiore a quella del tipo selvatico.

Prossimo, Abbiamo valutato l'immunogenicità dei prodotti IVT nell'AR murinaW264.7 cellule. Come mostrato nelle Figure 2A e 2B, i livelli di mRNA e proteine ​​dell'IFN-β sono stati ridotti nell'ARW264.7 cellule transfettate con mRNA prodotto da mutanti rispetto a quelle di tipo selvatico, indicando che l'mRNA sintetizzato dal T7 RNAP di tipo selvatico ha suscitato la risposta immunitaria più forte, mentre l'mRNA dei mutanti ha mostrato una risposta significativamente ridotta. Nello specifico, l'mRNA IFN-β delle cellule trattate con Mut11 RNA era solo il 9,7% delle cellule trattate di tipo selvatico e la sua proteina era 12,93 pg/mL. Inoltre, l'espressione di EGFP non ha mostrato differenze significative in quantità o qualità tra gli mRNA generati da diversi T7 RNAP (Figura 6C), soddisfacendo i requisiti per le applicazioni industriali.

Figura 6. Risposta IFN-β ed espressione EGFP nelle cellule dei mammiferi

Le attività RDRP e transferasi terminale del mutante sono molto più basseNoir rispetto a quelli del tipo selvatico.

Per studiare l'impatto delle mutazioni sulla riduzione del dsRNA, i ricercatori condotti studi in silico su tutte queste mutazioni. Il risultato suggerisce una chiara indicazione di ridotta attività RDRP nelle varianti, poiché mostrano una tendenza ridotta a utilizzare l'RNA come stampo. Analogamente, ciò potrebbe aver avuto un impatto sull'attività della transferasi terminale di T7 RNAP. Come mostrato in Figura 7, a diverse concentrazioni, tutte e 4 le varianti hanno mostrato meno del 50% del valore di fluorescenza rispetto al tipo selvatico.

Successivamente, è stato impiegato un test di eterogeneità dell'estremità 3' per caratterizzare l'attività di trasferimento terminale di T7 RNAP. Concentrandosi sulla proporzione di RNA con n>0, che riflette l'attività di transferasi terminale, i ricercatori hanno scoperto che questi RNA rappresentavano l'82,94% nel tipo selvatico, mentre i mutanti mostravano le seguenti percentuali: Mut11 (70,29%), Mut7 (67,88%), Mut14 (63,31%) e Mut17 (55,62%) (Figura 8)È importante notare che queste percentuali sono altamente coerenti con l'abbondanza di dsRNA nei prodotti (Figura 5)Questi risultati indicano una significativa riduzione dell'attività della transferasi terminale dei mutanti, che, insieme alla diminuzione dell'attività RDRP, contribuisce alla diminuzione del dsRNA.In particolare, l'attività della transferasi terminale potrebbe svolgere un ruolo più cruciale, come evidenziato dal più basso accumulo di n>0 RNA osservato in Mut17, che presenta anche la più bassa produzione di dsRNA. (Figura 5 e Figura 8).

Figura 7. Attività RDRP relativa

Figura 8Eterogeneità nell'estremità 3' dei prodotti di RNA

Conclusione

Questo studio fornisce una metodologia solida per identificare mutanti con contenuto di dsRNA ridotto e isola con successo più mutanti dsRNA che hanno ridotto l'attività della RNA polimerasi RNA-dipendente e della transferasi terminale. Rafforza sostanzialmente la convalida della sicurezza e dell'efficacia integrali alle terapie mRNA, sottolineandone le profonde implicazioni per l'avanzamento dei vaccini mRNA e delle applicazioni di terapia genica.

Allo stesso tempo, la società madre Yeasen ha anche lanciato un prodotto T7 RNAP che riduce significativamente il dsRNA contenuto. Diversi partner hanno già testato i mutanti T7 RNAP modificati sviluppati da Molefuture e il prodotto è stato ampiamente riconosciuto dai clienti. I nostri clienti ritengono che l'uso del nuovo enzima semplifichi il processo di purificazione dell'mRNA e riduce notevolmente l'immunogenicità dell'IVT prodotti, dimostrano prestazioni eccezionali in molteplici scenari applicativi, dimostrando il loro ampio potenziale applicativo nel campo biofarmaceutico!

Informazioni per l'ordinazione

Di seguito sono riportati i prodotti rappresentativi offerti da Yeasen. Sono disponibili altre dimensioni. I nostri prodotti sono altamente ottimizzati per funzionare in concerto, per aiutare a garantire prestazioni e riproducibilità superiori. Possiamo anche fornire servizi personalizzati. Se sei interessato a un prodotto che non è mostrato, contattaci e lavoreremo con te per soddisfare le tue esigenze.

Nome del prodotto Codice Prodotto Specifiche
CleaScrip™ T7 RNA Polimerasi (RNA a basso ds, 250 U/μL) 10628ES 10/100 KU
Kit di sintesi di RNA ad alta resa T7 10623ES 50/100/500 dollari
T7 RNA polimerasi di grado GMP (50 U/μL) 10624ES 5000/50000 unità
T7 RNA Polimerasi GMP-grade (250 U/μL) 10625ES 10/100 KU
10×tampone di trascrizione 2 GMP-grade 10670ES 1/10 ml
Pirofosfatasi, inorganica GMP-grade 0,1 unità/(milioni di litri) 10672ES 10/100/1000 U
Inibitore della RNasi murina di grado GMP 10621ES 20/10/100 KU
BspQI GMP-grado 10664ES 500/2500 unità
DNasi I Grado GMP 10611ES 500/2000/10000 unità
Enzima di capping del vaccino mRNA di grado GMP 10614ES 2000/10000/100000 U
mRNA Cap 2'-O-metiltransferasi di grado GMP 10612ES 2000/10000/50000 unità
10×Tampone di tappatura GMP-grade 10666ES 1/10 ml
S-adenosilmetionina (SAM)(32 mM) 10619ES 0.5/25/500 ml
Soluzione di sale trisodico di pseudouridina-5-trifosfato (100 mM) 10650ES 20 μL/100 μL/1 mL
Soluzione di sodio N1-Me-Pseudo UTP (100 mM) 10651ES 20 μL/100 μL/1 mL
Soluzione ATP (100 mM) 10129ES 1/25/500 ml
Soluzione CTP (100 mM) 10130ES 1/25/500 ml
Soluzione UTP (100 mM) 10131ES 1/25/500 ml
Soluzione GTP (100 mM) 10132ES 1/25/500 ml
Soluzione NTP Set (ATP, CTP, UTP, GTP, 100 mM ciascuno) 10133ES 1 set (4 fiale)
Detergente RNA Hieff NGS™ 12602ES 1/5/60/450 ml
Soluzione ATP Tris GMP-grade (100 mM) 10652ES 1/5/25/500ml
Soluzione CTP Tris GMP-grade (100 mM) 10653ES 1/5/25/500ml
Soluzione GTP Tris GMP-grade (100 mM) 10655ES 1/5/25/500ml
Soluzione di Pseudo UTP Tris di grado GMP (100 mM) 10656ES 1/5/25/500ml
Soluzione N1-Me-Pseudo UTP Tris di grado GMP (100 mM) 10657ES 1/5/25/500ml
ARCA (Anti Reverse Cap Analog) 10681ES 1/5/25/500ml
Kit ELISA RNA a doppio filamento (dsRNA) 36717ES 48T/96T

Indagine