這 磁的 殘差 脫氧核糖核酸 樣本 準備套件 是 合適的 為了 這 預處理 的 殘差 脫氧核糖核酸 在 各種各樣的 生物 樣品。它利用獨特的磁珠和精心的 最佳化的緩衝系統。

磁性 殘留DNA樣本製備試劑盒 可與多種宿主細胞殘留DNA一起使用 檢測試劑盒，包括 CHO 宿主細胞 DNA 殘留檢測試劑盒 （Cat#41301ES），HEK293 宿主細胞 DNA 殘留檢測試劑盒 （Cat#41302ES），Vero 宿主細胞 DNA 殘留檢測試劑盒 （目錄號：41303ES）， 及大腸桿菌宿主細胞DNA殘留檢測試劑盒 （目錄號#41304ES）。

產品組件

運輸和儲存

1. 第一部分用冰袋運輸，4°C 保存 1 年或 長期儲存溫度為-20°C。

2. 第二部分在室溫下運輸，並在室溫下保存1年。

3. 第三部分用乾冰運輸並儲存於-20°C 為期1年。

4. 收到貨後，請檢查第一部分、第二部分、第三部分三個組分是否齊全，並立即存放在相應的儲存溫度內。

注意事項

1. 使用前請仔細閱讀使用說明書，並嚴格遵守使用說明書進行操作。建議在無塵台或生物安全櫃上進行樣品處理。

2. 常溫保存的溶液要注意觀察是否有沉澱或混濁（特別是冬天等室溫較低時），可37℃水浴至溶液澄清為止，以免影響使用效果。

3. 洗脫過程中可能會有殘留磁珠，因此抽取樣本時盡量避免吸走磁珠。

4. 使用本產品時，請經常更換吸頭以避免交叉污染。

5. 為了您的安全和健康，操作本產品時，請穿戴個人防護裝備（PPE），例如實驗室工作服和一次性手套。

6. 本產品僅供研究使用！

前期準備

1. 自備設備：渦旋振盪器、水浴或金屬浴、離心機、磁分離架、杭州奧盛Auto-Pure32A全自動核酸萃取儀或其他品牌全自動核酸萃取儀。

2. 自備耗材：10μL-1000μL 低吸附濾芯吸頭、1.5mL低吸附離心管、PCR管或96孔板及相應的管蓋或膜。

3. 自製試劑：無水乙醇（分析純）、1×PBS緩衝液（pH 7.4，不含Mg、Ca離子）、超純水。

4. 首次使用時，請將標籤或說明書中標示量的無水乙醇加入洗滌液A*和洗滌液B*的瓶中， 使用前充分混合，並做好標記。使用後請將瓶蓋蓋緊，以保持瓶中的乙醇含量。

手動殘留 DNA 萃取

1. 樣品處理

1.1 若樣本中DNA含量較高，例如疫苗，請以1×PBS緩衝液（pH7.4.不含Mg、Ca離子） 然後提取（樣本的稀釋是為了使檢測值在標準曲線的線性範圍內，確保檢測的準確性，通常可以考慮100倍稀釋）。

1.2 如果要測試的樣品 是乾粉，稀釋至 10 mg/mL 或 100 mg/mL，含 超純水 使用前。

1.3 若樣品基質複雜，應進行標準加入回收實驗，以確定適當的稀釋度。

2. 將 100 μL 樣品加入 1.5 mL 管中， 然後加入 100 μL 裂解緩衝液、10 μL 蛋白酶 K，渦旋並混合 10 秒。

【註】：蛋白樣品濃度0-100 mg/mL時加入10 μL蛋白酶K，蛋白樣品濃度100-200 mg/mL時加入20 μL蛋白酶K。

3. 60°C 孵育 20分鐘。

4.然後添加 400 μL 結合溶液、9 μL 肝醣和 6 μL 聚 A 鉀鹽，渦旋混勻。

5. 加入20 μL磁珠，渦旋混勻，靜置10分鐘。請渦旋並混合 10 秒鐘 每 3 分鐘

【注意事項】：磁珠使用前需渦旋混合，確保磁珠徹底懸浮。一次性加入4-5個樣本後建議再次混合。

7. 短暫離心以使溶液沉澱，然後將離心管放在磁力架上 1-2 分鐘。待磁珠完全吸收後，小心除去液體。

8. 加入500 μL洗滌液A （使用前請檢查是否已加入無水乙醇），振搖或渦旋混勻，確保磁珠分散，無磁珠聚集在離心管壁上。

9. 短暫離心，並將離心管放在磁力架上 1-2 分鐘。待磁珠完全吸收後，小心除去液體。

10. 加入500 μL洗滌液B （使用前請檢查是否已加入無水乙醇）， 搖晃或渦旋混勻，確保磁珠分散，沒有磁珠聚集在離心管壁上。

11. 短暫離心，並將離心管放在磁力架上 1-2 分鐘。待磁珠完全吸收後，小心除去液體。

12. 為了確保盡可能去除殘留液體，將管子離心 10 秒鐘 迅速置於磁力架上，並以10 μL移液器吸去殘留液體。

13. 打開管蓋，在室溫下放置 3 分鐘 直至乙醇完全揮發。磁珠表面沒有反光或出現裂紋，表示乙醇已經完全蒸發。

14. 從磁力架上取出試管，加入50-100 μL預熱至65°C的洗脫液，並搖勻。然後短暫離心，在 65°C 下孵育 5 分鐘，每隔 2-3 分鐘搖晃並混合。

15. 再次短暫離心，將離心管放在磁力架上 2 分鐘。待磁珠完全吸附後，小心地將DNA溶液轉移到新的離心管中，並保存在-20°C下，或-80°C下長期保存。