설명
Concanavalin A(ConA) 비드는 Concanavalin A와 공유 결합된 초상자성 폴리머 미세구체입니다. (곡물 식물의 씨앗에서 분리된 식물성 만노스/포도당 결합 렉틴)이 표면에 있습니다. 이 구슬 단분산성과 강한 자기 반응성을 포함한 몇 가지 주목할 만한 특성을 가지고 있습니다. Ca 2+ 및 Mg 2+ 이온이 존재할 때 ConA 자기 비드는 ConA 글로불린 A와 말단 α-D-만노스 및 α-D-글루코스 그룹 간의 친화력을 활용하여 폴리사카라이드, 당단백질 및 당지질과 같은 다양한 생체 분자를 효율적이고 빠르게 분리하고 정제할 수 있습니다.
ConA 자기 비드는 세포를 분리하거나 고정하는 편리한 방법을 제공하여 후속 세척 단계에서 세포 손실을 최소화합니다. 또한, 핵의 수집 및 고정에 사용할 수 있습니다. 게다가, 이러한 비드는 ChIP-seq 실험에 사용되는 혁신적인 접근 방식인 CUT & Run 및 CUT & Tag와 같은 혁신적인 기술에서 유용성을 찾습니다.
요약하자면, ConA 자기 비드는 생체 분자의 효율적인 정제, 편리한 세포 분리 및 고정, 핵 수집, 최첨단 실험 기술에의 응용을 위한 강력한 도구입니다.
명세서
제품번호 |
19810ES01 / 19810ES03 / 19810ES08 / 19810ES20 |
크기 |
200 μL / 1 mL / 5 mL / 20 mL |
특성
형질 |
설명 |
제품 내용 |
특정 보호 완충액에 10 mg/mL 자기 비드 |
결합된 단백질 |
콘카나발린 A |
용량 |
10 5 세포/μL |
구슬 크기 |
1㎛(마이크로미터) |
자화 |
초상자성 |
애플리케이션 |
세포 또는 당단백질 분리, CUT&RUN, CUT&Tag |
저장 버퍼 |
PBS(pH7.4), 0.01% 트윈-20, 0.05% 프로클린-300 |
그림과 표
일괄 |
입력 세포/mL |
남은 세포 /ml |
캡처율 |
공백 |
7.66E+06 |
7.66E+06 |
없음 |
B2901 |
7.66E+06 |
5.12E+04 |
99.33% |
B2901 |
7.66E+06 |
4.78E+04 |
99.38% |
B2902 |
7.66E+06 |
3.41E+04 |
99.55% |
B2902 |
7.66E+06 |
5.46E+04 |
99.29% |
표 1. Yeasen ConA 비드는 높은 포획률을 가지고 있습니다. 마이크로스피어에 비례하여 사용된 Concanavalin A(ConA)의 양은 CUT&Tag 실험에서 세포 결합 후 과도한 자기 비드 응집을 방지하면서 최대 결합 용량을 보장하는 것으로 검증되었습니다. 예를 들어, ConA 코팅 비드 10 μL를 사용하면 E7 수준과 동일한 양의 세포를 결합할 수 있으며 결합 효율은 98%를 초과합니다.
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그림 1. Yeasen ConA 비드는 높은 분산도를 보입니다. 비드 라벨링 공정에서 비생물학적 실런트를 선택하여 배치 간 변화에 영향을 받지 않고 효율적인 폐쇄를 보장했습니다. 이를 통해 자성 비드의 우수한 밀봉이 보장되어 ConA 코팅 비드를 보관하는 동안 높은 단일 분산도가 유지되며, 이는 후속 실험에서 탄수화물 분자에 효율적으로 결합하는 데 도움이 됩니다.
그림 2. Yeasen Con A Beads를 사용한 CUT&Tag 크로마틴 신호 분포.
저장
본 제품은 2~8℃에서 2년간 보관하시기 바랍니다.
지침
다음 작업은 당단백질 정제 또는 세포 분리를 예로 들 수 있습니다. 컷앤태그 실험 , 프로토콜에 대한 내용은 Yeasen Cat# 12598ES를 참조하세요.
- 버퍼의 준비
1) 고객 제공
완충기 |
구성 요소 |
바인딩 버퍼 |
20 mM HEPES(pH7.5), 10 mM KCl, 1 mM CaCl2 , 1 mM 염화 망간 2 |
세척 버퍼 |
20 mM HEPES(pH7.5), 150 mM 염화나트륨, 0.5밀리미터 스페르미딘, 1×프로테아제 억제제 칵테일 |
용출 완충액 |
5mM 트리스(pH8.0), 150mM NaCl, 1M 포도당 |
- 필수 재료 불포함 사항: 자석 스탠드, 에펜도르프 튜브, PCR 튜브, 자석 스탠드, 열 순환기 등.
- 비즈를 최소 30분 동안 실온에서 평형을 유지하세요. 병을 흔들거나 진탕하여 비즈를 완전히 현탁시키세요.
- 샘플 취급( 포유류 세포를 예로 들면 )
- 포유류 세포(1.0×10 4 ~1.0×10 5 세포)를 준비하고 원심분리(4℃,600×g, 3~5분)합니다. 상층액을 버립니다.
- 140 μL 결합 완충액을 첨가하고 잘 섞은 후 세포를 현탁시키고 원심분리하여 수집합니다(4℃,600×g, 3~5분). 상층액을 버립니다.
- 90 μL 결합 완충액을 첨가하고 잘 섞은 후 세포를 재현탁시킵니다.
주의: 단단히 부착된 포유류 세포는 트립신과 같은 효소를 사용하여 부분 소화를 통해 얻을 수 있습니다. 동물 조직, 식물 세포 또는 균류 세포의 경우 분산된 세포 또는 원형질체를 얻으려면 종종 특정 특성에 맞게 조정된 특수 처리가 필요합니다.
- ConA 비즈를 준비하세요
- ConA 비드를 완전히 현탁시킬 때까지 부드럽게 피펫팅한 다음 10을 놓습니다. 새로운 200 μL 원심분리관에 비드 현탁액 1 μL를 넣습니다.
- 40 μL의 결합 완충액을 첨가하고 잘 섞은 후 자석 스탠드에 1분간 올려놓고 자석 비드가 원심분리관 측벽에 흡착되면 상층액을 버립니다.
- 10 μL 결합 완충액을 첨가하고 잘 섞은 후, ConA 비드를 재부유시킵니다.
- 샘플 바인딩
- 준비된 세포 샘플을 전처리된 비드에 넣고, 재부유된 비드를 조심스럽게 피펫으로 섞은 다음, 인버티드 믹서(실온에서 30분 또는 4℃에서 밤새)에서 배양합니다.
- 1분 동안 자석 스탠드에 서서 자석 비드가 원심분리관 측벽에 흡착될 때까지 기다린 후, 상층액을 조심히 버립니다.
- 세포-ConA 비드 복합체에 500 μL 용출 완충액을 첨가합니다. 부드럽게 피펫으로 구슬을 다시 현탁한 다음 1분 동안 자석 스탠드에 서서 자석 비드가 원심분리관 측벽에 흡착될 때까지 기다린 후, 상층액을 조심히 버립니다.
- 3) 단계를 3~4번 더 반복합니다.
- 용출
- 당단백질의 경우, 50~250 μL 용출 완충액을 넣고, 재부유시킨 비드를 부드럽게 피펫으로 옮긴 다음, 역전 믹서(실온에서 10~30분)에서 배양합니다. 역전 혼합 후, 자석 스탠드에 1분 동안 서 있고, 상층액을 새로운 1.5 mL 튜브에 모아 SDS-PAGE 또는 Western blot을 진행합니다.
- 세포의 경우 용출이 필요 없습니다.
노트
- 평형을 이루다 사용 전 ConA 비드를 실온으로 두세요.
- 동결은 피하십시오. 동결하면 구슬 재료가 분해되거나 활동이 손실됩니다.
- ConA가 활성화되려면 Ca2+와 Mn2+ 이온이 필요하므로 실험 중에는 EDTA나 기타 금속 이온 킬레이트제가 함유된 시약은 피해야 합니다.
- 세포와 함께 배양하면 ConA 비드가 응집될 수 있는데, 이는 정상적인 현상이며 자석 비드의 정상적인 사용에는 영향을 미치지 않습니다.
- 이 제품은 연구 목적으로만 사용됩니다.
- 안전을 위해 실험실 가운과 일회용 장갑을 착용해 주시기 바랍니다.
결제 및 보안
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문의
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자주 묻는 질문
이 제품은 연구 목적으로만 사용되며 인간이나 동물의 치료 또는 진단용으로 의도되지 않았습니다. 제품과 콘텐츠는
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