1. 什麼是樹突狀細胞(DC)?

樹突狀細胞(DC)是人體中最有效的抗原呈現細胞(APC)。 DC 是唯一能夠強烈刺激幼稚 T 細胞增生的 APC。其他類型的APC(例如單核細胞、巨噬細胞、B細胞等)只能刺激活化或記憶T細胞。因此,DC細胞是適應性T細胞免疫反應的啟動者,在腫瘤免疫中扮演極為重要的角色。 DC細胞表面高度表現MHC-I和MHC-II分子,並具有特定的表面標記。它們攝取、加工並刺激T細胞活化抗原,最終決定T細胞的分化方向。

2. 直流電源

DC 細胞在體內的存在量非常少。從體內直接從體內分離DC需要較長的時間且細胞產量很低,大大限制了DC的研究和應用。但DC可以由不同組織中的DC前驅細胞分化誘導,如骨髓液中的前驅細胞、週邊血和臍​​帶血中的單核細胞。

對於人類來說,由於人類週邊血液獲取最方便,且單核細胞數量最多,因此最常用的方法是從人類週邊血液單一核細胞(PBMC)誘導DC。對於小鼠來說,最常見的方法是從骨髓細胞誘導DC,也就是骨髓來源的樹突細胞(BMDC)。

圖1. 經典BMDC製備方法示意圖

3. BMDC製備方法

製備小鼠BMDC的常用方法有:

3.1 經典BMDC培養方法-Inaba方法(改良)

3.2 BMDC的大規模製備-Sons法

3.3 BMDC的大規模製備-Lutz法

3.1 【經典BMDC培養方法】-Inaba法(改良)

背景

一個。 透過 Inaba 方法獲得的 BMDC 數量為 5-7 x 106/老鼠;

b. 原始的Inaba方法僅使用GM-CSF來誘導BMDC的產生。所獲得的BMDC雖然在混合淋巴細胞反應中刺激能力較強,但DC的成熟度不如GM-CSF+IL-4聯合誘導的DC。因此後續改良的方法常採用GM-CSF+IL-4聯合誘導。

栽培步驟

3.1.1 取得小鼠骨髓細胞

1) 以頸椎脫臼法殺死小鼠(6-10週齡),手術切除所有股骨和脛骨,用剪刀和鑷子盡可能去除骨骼周圍的肌肉組織。

[筆記】不要損傷骨頭。

2) 將骨頭移至超淨台上,放入含有70%酒精的無菌培養皿中浸泡2-5分鐘,消毒滅菌,再用無菌PBS清洗兩次。

3) 將骨頭移至另一個含有 PBS 的新培養皿中,用剪刀剪斷骨頭的兩端,然後用注射器萃取 PBS。將針頭從骨頭的兩端插入骨髓腔,反覆將骨髓沖入培養皿中,直到骨頭完全變白。

4) 收集骨髓懸浮液,用200目尼龍網濾除小碎片和肌肉組織。

5) 將濾液在 1200 度下離心 轉速 5 分鐘 棄上清液。

6) 加入2 ml氯化銨紅血球裂解緩衝液(1x),重懸細胞,室溫孵育3-5 分鐘,最多 10 分分鐘

7) 加入 10 ml PBS 以中和裂解緩衝液的作用,然後以 1200 rpm 的速度離心 5 分鐘 棄上清液。

8) 用 PBS 清洗一次,然後用含有 10% FBS 的 RPMI1640 培養基重懸細胞。已獲得小鼠骨髓細胞。

氯化銨紅血球裂解液的製備:

一個。 製備 10x 儲存溶液如下:秤重 82.9 氨氮4氯氣,10.0g KHCO3 和0.37g鈉2EDTA,溶於1L蒸餾水,過濾,用0.22 μm濾膜除菌,4℃保存6個月;

b. 使用前,用無菌蒸餾水將10x儲存溶液以1:9的比例稀釋為1x工作溶液。

[筆記] 由於氯化銨紅血球裂解液對骨髓細胞有一定的損害作用,因此應盡可能縮短溶血時間。

3.1.2 誘導 BMDC 分化

1) 計數步驟1中所得的小鼠骨髓細胞,調整細胞濃度為0.5-1×106/ml含10%FBS的RPMI 1640完全培養基。

2) 將細胞接種於24孔培養板中,每孔1ml細胞,加入重組鼠GM-CSF(20 納克/毫升) 和 IL-4 (10 納克/毫升), 培養於37℃、5% CO2 孵化器。這是文化的第0天。

筆記

一個。 一般約4-5x107 可以從一隻小鼠身上收穫骨髓細胞,因此可以接種24孔板的至少40-50個孔。

b. GM-CSF 和 IL-4 的濃度範圍為 20-50 納克/毫升 和 10-40 納克/毫升, 分別。

3) 每2天輕輕搖晃培養板一次,然後用新鮮培養基替換3/4體積並補充細胞激素。

4) 在第5天和第8天之間,輕輕吹動培養基以收集懸浮細胞和鬆散附著的細胞。

5) 1200 度離心 轉速 5 分鐘 棄上清液。

6) 將細胞重懸於含10%FBS的RPMI 1640完全培養基中,計數,調整細胞濃度為1×106/ml,並加入重組小鼠GM-CSF(20 納克/毫升) 和 IL-4 (10 納克/毫升)。

7) 將細胞接種於 100 毫米培養皿(每皿最多 10 毫升)或 6 孔培養板(每孔 2 毫升)。

8) 繼續在37℃、5% CO2 中培養2 孵化器內培養 1-2 天。

9) 收集懸浮細胞,這些細胞是更成熟的 BMDC。

筆記

一個。 步驟2.5-2.8為重新鍍層步驟,目的是為了讓步驟2.4所獲得的BMDC更加成熟。

b. 重新鋪板後3小時內可以看到許多帶刺的貼壁細胞從DC簇中遷移出來,而培養1天后會發現這些貼壁細胞脫離培養板底部,可以看到很多典型的DC漂浮在培養基中。

3.1.3 BMDC 完全成熟

[注意] 步驟2中獲得的BMDC不是完全成熟的DC。若想獲得完全成熟的DC,仍需要透過LPS、CD40L或TNF-a進行誘導。

1) 將步驟 2.4 或 2.9 中獲得的 BMDC 以 1200 的速度離心 轉速 5 分鐘 棄上清液。

2) 以含有重組小鼠 GM-CSF 的 RPMI 完全培養基重懸沉澱物(20 納克/毫升) 和 IL-4 (10 納克/毫升), 並調整細胞濃度為1×106計數後為/ml。

3) 加入24孔培養板,並加入成熟誘導劑,如TNF-α(250 單位/毫升)、脂多醣(1 μg/mL) 或 CD40L (1 (微克/毫升)。

4) 培養於37℃、5% CO2 孵化器內培養 2 天。

5) 收集懸浮的細胞和鬆散地附著在壁上生長的細胞,這些細胞即為成熟的樹突狀細胞。

3.2BMDC量產法-Son 方法

背景

一個。 此方法可得到30-40×106 DC/mouse 在7天內,是Inaba經典方法的7-10倍。 DC經14.5%甲泛醯胺梯度離心後純度(即CD11c+/I-Ab+細胞)可達85-95%。

b. 此方法所得的DC的內吞能力比Inaba經典方法弱,但分泌的IL-12p70的量相似。

c. 此方法所獲得的DC在混合淋巴細胞反應中刺激能力比Inaba經典方法更強。

d. 透過此方法獲得的DC可以誘導更強的特異性T細胞反應。

e. 綜上所述,Son方法比經典方法可以獲得更多、更成熟的BMDC。

栽培步驟

3.2.1 取得小鼠骨髓細胞

請參閱 Inaba 方法(已修改)中的對應步驟。

3.2.2 大量BMDC的製備

1) 計數步驟1中所得的小鼠骨髓細胞,調整細胞濃度為2×105/ml含10%FBS的RPMI 1640完全培養基

2) 接種於6孔培養板中,每孔5ml細胞,加入重組鼠GM-CSF(1000 單位/毫升)和IL-4(1000 單位/毫升), 培養於37℃、5% CO2 孵化器

3) 培養第4天,向培養系統補充重組鼠GM-CSF(1000 單位/毫升)和IL-4(1000 單位/毫升

4) 收集培養第 7 天的 DC,用 2-4 ml RPMI 1640完全培養基,加入等體積的14.5%(w/v)美帕內瑪,室溫離心20 最低 1200xg

5) 收集中間層,用RPMI 1640完全培養基洗滌三次,備用。

[筆記] 此時的 DC 是未成熟的 BMDC。如果您想進一步使其成熟,請跳至步驟 3。

3.2.3 BMDC 全面成熟

1) 將步驟 2.4 收集的 BMDC 重新接種,並加入重組小鼠 GM-CSF (1000 單位/毫升)和IL-4(1000 單位/毫升),以及LPS (1-10 微克/毫升)到文化系統

2) 培養於37℃、5% CO2 培養箱中培養2天即可獲得成熟的BMDC。

3.3BMDC批量製備方法-Lutz方法

背景

一個。 Lutz法與Son法類似,兩種方法都可以大量製備BMDC,但Lutz法比Son法應用更廣泛。

b. 此方法可獲得更多BMDC,高達1-3 x 108 DC/mouse,純度可達90-95%;

c. 此方法使用的細胞激素濃度比Son方法低很多,僅200 單位/毫升,然後下降到30-100 單位/毫升 培養第8~10天,可大幅節省試劑成本;

d. 此方法與Inaba經典方法及Son方法最大的不同在於,將骨髓細胞培養在細菌培養皿(Petri dish)中,而不是細胞培養板中。稻葉解釋道,細菌培養皿不容易讓骨髓中的巨噬細胞貼壁,進而抑制巨噬細胞的發育,避免巨噬細胞對DC成熟的抑製作用。這可能是該方法能夠以較低的接種密度獲得大量 BMDC 的主要原因。

e. 但此方法培養時間較長,需10-12天。一方面,這是為了獲得更多的BMDC。另一方面,大多數粒細胞和淋巴細胞很難存活這麼長時間,因此可以提高最終獲得的BMDC的純度;

f. 此方法僅利用GM-CSF進行誘導培養,所得的BMDC包含未成熟DC和成熟DC。為了進一步提高成熟度,再用LPS或TNF-α誘導1-2天,成熟DC細胞含量將達到50-70%。

栽培步驟

3.3.1 取得小鼠骨髓細胞

請參閱Inaba方法(修改後)對應步驟,注意應省略溶血步驟。

3.3.2 BMDC 的大規模製備

1) 計數步驟1中所得的小鼠骨髓細胞,調整細胞濃度為2×105/ml含10%FBS的RPMI 1640完全培養基;

2) 鋪於100mm細菌培養皿(Petri Dish),每皿10ml細胞,加入重組鼠GM-CSF(200 單位/毫升),37℃、5%CO2培養箱培養;

[筆記] 這裡使用的是細菌培養皿,而不是細胞培養板。

3) 第3天,加入10ml含有20 納克/毫升 將重組鼠GM-CSF移至培養皿中;

4) 在第6天和第8天,更換一半培養基,即收集舊培養基,用含有20 納克/毫升 離心後回收重組鼠GM-CSF,然後將細胞懸浮液放回原皿中;

5) 第十天即可收集細胞,即為BMDC。

3.3.3 BMDC 完全成熟

1) 培養第10天,用移液管輕輕吹打DC,收集懸浮細胞,室溫300xg離心5分鐘;

2) 棄上清,以10ml RPMI 1640完全培養基重懸細胞沉澱,再鋪於100mm細胞培養板;

3) 加入重組小鼠 GM-CSF (100 單位/毫升) 和 TNF-α (500 單位/毫升)或重組小鼠GM-CSF(100 單位/毫升)和LPS(1 毫克/毫升);

4) 繼續在37℃、5% CO2 中培養2 孵化器內培養 1-2 天。

4. BMDC 的鑑定

公升 形態學觀察:BMDC多數呈集落狀生長,細胞內有多個樹突突起,在成熟的BMDC中更為明顯。

公升 細胞表型分析:流式細胞儀檢測DC細胞表面CD11c、CD40、CD80、CD86、MHCⅡ類分子(IA/IE)的表達。 BMDC高度表達這些分子,在完全成熟的BMDC中這些分子的表達會進一步增加。

公升 混合淋巴球反應(MLR):BMDC具有較強的刺激能力,且成熟度越高,刺激能力越強。

5. 如何選擇成熟誘導劑?

LPS、CD40L 和 TNF-α 是人類 DC 和小鼠 DC 常用且有效的成熟誘導劑。 TNF-a誘導DC成熟的能力在三者中是最弱的。 LPS 和 CD40L 都是體外 DC 完全成熟的強效誘導劑。兩者誘導DC的成熟過程相似,但誘導的細胞激素譜不同。 CD40L誘導的成熟BMDC在體內表現出最強的免疫調節能力,包括產生保護性和治療性腫瘤免疫反應。用LPS刺激DC完全成熟的濃度一般為1-10 μg/mL,但實際上0.1 μg/mL的效果已經非常強了,但為了保險起見,1 一般以μg/mL表示。需要注意的是,CD40L分子屬於TNF配體家族,其特徵是只有形成三聚體後才能發揮作用。所以最好用重組CD40L三聚體蛋白來刺激DC,會有很好的效果。如果用CD40L單體來刺激DC,大多數情況下成熟度不是很高。

6. 訓練方式的選擇

表 1.三種製備BMDC的常見實驗方法比較

範圍

經典的BMDC培養方法-Inaba方法

BMDC的大規模製備-Son法

BMDC的大規模製備-Lutz法

PubMed 中的引用次數

783

24

663

骨髓溶血、紅血球溶解

是的

是的

骨髓首先清除淋巴球

是的

培養過程中去除粒細胞

是的

骨髓細胞的初始接種體積

1毫升

15毫升

10毫升

孵化器

24 孔細胞培養板

6孔細胞培養板

100mm細菌培養皿

培養基

RPMI1640+10% 胎牛血清

小鼠 GM-CSF 濃度

200-1000 單位/毫升

初始添加濃度為125-1000 單位/毫升

第4天和第7天在培養系統中加入足量的GM-CSF和IL-4。

初始添加濃度為200 單位/毫升。3-100 單位/毫升 第十天后

小鼠IL-4

不必

需要濃度與GM-CSF相同

不必

液體交換法

第2天和第4天棄去50%~75%的舊培養基(其中含有細胞),換成含有足量GM-CSF的新鮮完全培養基。

/

第3天加入等體積含有GM-CSF的完全培養基。第6、8、10天更換一半培養基。將舊培養基(含細胞)吸出、離心,重新懸浮在含有 GM-CSF 的新鮮完全培養基中,然後放回。

傳代前培養時間(擴增)

6天

7 天

10 天

傳代後培養時間(成熟)

2 天

沒有任何

1-2天

成熟誘導劑

TNF-α250 單位/毫升

脂多醣(1-10 微克/毫升)

TNF-α250 單位/毫升或 LPS(1 微克/毫升)

DC細胞採集時間

7-8天

7-8天

10-13天

直流純度

第 8 天60-70%

第 7 天85-95%

第 10-12 天80-90%

DC 生產/小鼠

(5-7)×106

(3-4)×107

(1-3)×108

7. 推薦的DC培養試劑

產品名稱

尺寸

小鼠 GM-CSF

91108ES

5 微克/50 微克/100 微克/500 微克

小鼠IL-4

90144ES

5 微克/50 微克/100 微克/500 微克

小鼠TNF-α

90621ES

5 微克/20 微克/50 微克/500 微克

小鼠 CD40L 三聚體蛋白

94016ES

二十五 微克/100 微克/500 微克

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