전체 전사체 연구
[전사체 시퀀싱 - 비코딩 RNA와 mRNA의 표적 조절 및 상호작용 관계 연구]
전체 전사체 고처리량 시퀀싱은 리보솜 고갈 스트랜드 특정 라이브러리 구축 방법과 작은 단편 풍부 스크리닝 라이브러리 구축 방법을 채택하여 코딩 RNA와 비코딩 RNA의 라이브러리 구축, 시퀀싱, 정보 분석, 공동 분석 및 ceRNA 등을 달성할 수 있으므로 특정 생물학적 과정(예: 발달, 질병 등)과 관련된 전체 RNA 전사체 데이터 정보를 빠르고 포괄적이며 정확하게 얻을 수 있습니다. 데이터 분석을 통해 생물학적 조절 메커니즘에 대한 연구는 "네트워크와 다단계"를 결합한 3차원 모델로 확장될 수 있으며, 이는 생물학적 현상을 포괄적으로 해석하는 데 도움이 됩니다.
전체 전사체 시퀀싱에는 두 가지 방법이 있습니다. 하나는 LncRNA-Seq + Small RNA이고, 다른 하나는 LncRNA-Seq + Small RNA + CircRNA입니다. 이 방법을 사용하면 CircRNA에 대한 더욱 포괄적인 정보를 얻을 수 있습니다.
1. 두 개의 라이브러리를 사용한 전체 전사체 시퀀싱: LncRNA-Seq + Small RNA
2. 3개 라이브러리를 이용한 전체 전사체 시퀀싱: LncRNA-Seq + Small RNA + CircRNA
전체 전사체 원료 용액
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분류 |
동물 카테고리 |
식물 카테고리 |
박테리아 및 곰팡이 범주 |
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샘플 유형 |
동물 조직/세포 |
셀 |
전혈 |
식물 조직 |
곰팡이 조직 |
배양된 박테리아와 균류 |
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RNA 추출 |
자기 비드 방법: 18605/18607/18606; 컬럼 방법: 19221/19211; 트리졸법: 10606/19202 |
자기 비드법: 18600/18604; 컬럼법: 19231 |
컬럼 방법: 19241; 트리졸법: 19201 |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
컬럼 방법: 19301(곰팡이는 Lysozyme 10403을 첨가해야 함) |
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miRNA 추출 |
컬럼 방법: 19331 |
컬럼 방법: 19331 |
컬럼 방법: 19332 |
컬럼 방법: 19331 |
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miRNA 라이브러리 구축 |
예상할 수 있다 |
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rRNA 제거 |
RNase H 효소 제거: 12257; 3분 급속 제거: 12258(인간 유래 제거); 자기 비드법 제거: 12266(포유류 범용형)/12267 조류 범용형/12268 가금류/12269 얼룩말바리/12270 초파리/12275 굴/12278 편형동물/12285 벌/12286 황금구형거미/12289 진드기/12290 흰줄숲모기/12287 선충류 |
RNase H 효소제거 : 12257; 3분 급속제거 : 12258 (인간제거, 병원체에 적합) |
글로빈 제거를 포함한 RNase H 효소 제거: 12257 + 12806; 글로빈의 RNase H 효소 제거: 13572; 3분 급속 제거: 12258 + 12260 |
RNase H 효소 제거: 12254; 자기 비드법 제거: 12262 속씨식물 |
자기비드법 제거 : 12271 곰팡이 범용형 |
자기비드법 제거 : 12264 세균 범용형/12265 원핵생물 범용형 |
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도서관 건설 |
사전 혼합되지 않은 RNA 라이브러리 구축 키트: 12308 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환) 사전 혼합 RNA 라이브러리 구축 키트: 12310 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환)/12340(액티노마이신 D, dUTP 없음)/12341(액티노마이신 D, dTTP 없음) |
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LncRNA 연구
긴 비코딩 RNA(LncRNA)는 독특한 조절 기능을 가진 비코딩 RNA의 일종으로 최근 몇 년 동안 광범위한 주목을 받고 있습니다. LncRNA의 길이는 200nt 이상이며 단백질을 인코딩하지 않으며 종 간 보존성이 낮습니다. 일부 서열 구조는 mRNA와 유사하지만(polyA 꼬리 및 대체 스플라이싱 포함), 다른 구조는 이러한 특성을 가지고 있지 않습니다. 현재 LncRNA의 생성 및 기능 메커니즘은 아직 완전히 이해되지 않았지만 중요한 생물학적 기능(예: 암 발생, X 염색체 침묵 및 기타 조절 요인과의 복잡한 조절 네트워크 형성)을 가진 많은 LncRNA가 발견되었습니다.
LncRNA 시퀀싱 기술 경로
LncRNA 시퀀싱 원료 솔루션
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분류 |
동물 카테고리 |
식물 범주 |
박테리아 및 곰팡이 범주 |
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샘플 유형 |
동물 조직/세포 |
셀 |
전혈 |
식물 조직 |
곰팡이 조직 |
배양된 박테리아와 균류 |
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RNA 추출 |
자기 비드법: 18605/18607/18606; 컬럼법: 19221/19211; 트리졸법: 10606/19202 |
자기 비드법: 18600/18604; 컬럼법: 19231 |
컬럼법: 19241; 트리졸법: 19201 |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
컬럼 방법: 19301(곰팡이는 lywallzyme 10403을 추가해야 함) |
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rRNA 제거 |
RNase H 효소 제거: 12257; 3분 급속 제거: 12258(인간 유래 제거); 자기 비드법 제거: 12266(포유류 범용형)/12267 조류 범용형/12268 가금류/12269 얼룩말바리/12270 초파리/12275 굴/12278 편형동물/12285 벌/12286 황금구형거미/12289 진드기/12290 흰줄숲모기/12287 선충류 |
RNase H 효소제거 : 12257; 3분 급속제거 : 12258 (인간제거, 병원체에 적합) |
글로빈 제거를 포함한 RNase H 효소 제거: 12257 + 12806; 글로빈의 RNase H 효소 제거: 13572; 3분 급속 제거: 12258 + 12260 |
RNase H 효소 제거: 12254; 자기 비드법 제거: 12262 속씨식물 |
자기비드법 제거 : 12271 곰팡이 범용형 |
자기비드법 제거 : 12264 세균 범용형/12265 원핵생물 범용형 |
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도서관 건설 |
사전 혼합되지 않은 RNA 라이브러리 구축 키트: 12308 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환) 사전 혼합 RNA 라이브러리 구축 키트: 12310 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환)/12340(액티노마이신 D, dUTP 없음) |
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진핵생물 전사체 연구
진핵생물 전사체 연구는 RNA-seq 기술을 사용하여 특정 기능 상태에서 특정 세포가 전사할 수 있는 총 mRNA를 얻습니다. 그런 다음 다운로드한 원시 데이터를 스플라이스하여 조립하고 유전자 발현 수준을 계산하고 차등 분석 및 기능 풍부 분석을 수행합니다. 종의 대부분 유전자 정보를 얻을 수 있을 뿐만 아니라 전체 수준에서 유전자 발현 차이와 기능 경로 변화를 연구하고 특정 생물학적 과정의 분자 메커니즘을 밝힙니다.
진핵생물 전사체 시퀀싱 기술 경로
진핵생물 전사체 시퀀싱 원료 솔루션
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분류 |
동물 카테고리 |
식물 카테고리 |
곰팡이 카테고리 |
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샘플 유형 |
동물 조직/세포 |
셀 |
전혈 |
식물 조직 |
곰팡이 조직 |
배양된 균류 |
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RNA 추출 |
자기 비드법: 18605/18607/18606; 컬럼법: 19221/19211; 트리졸법: 10606/19202 |
자기 비드법: 18600/18604; 컬럼법: 19231 |
컬럼법: 19241; 트리졸법: 19201 |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
컬럼법 : 19301(리소자임 10403 첨가) |
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mRNA 캡처 |
12629 mRNA 분리 마스터 키트 |
12629 mRNA 분리 마스터 키트 |
12629 mRNA 분리 마스터 키트 |
12629 mRNA 분리 마스터 키트 |
12629 mRNA 분리 마스터 키트 |
12629 mRNA 분리 마스터 키트 |
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도서관 건설 |
사전 혼합되지 않은 RNA 라이브러리 키트: 12308 듀얼 모드 RNA 라이브러리 키트(Illumina 및 MGI 호환) mRNA 캡처가 포함된 사전 혼합되지 않은 RNA 라이브러리 키트: 12309 듀얼 모드 RNA 라이브러리 키트(Illumina 및 MGI 호환) 사전 혼합 RNA 라이브러리 키트: 12310 듀얼 모드 RNA 라이브러리 키트(Illumina 및 MGI 호환)/12340(Actinomycin D, dUTP 없음) |
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circRNA 연구
[circRNA 시퀀싱 - circRNA의 차등적 발현이 생물학적 과정에 미치는 영향에 대한 연구]
원형 RNA(circRNA)는 특수한 유형의 비코딩 RNA 분석입니다. 시퀀싱은 시퀀싱 플랫폼을 사용하여 참조 게놈이 있는 샘플의 소스 유전자에 대한 정확한 circRNA 식별 및 분석을 수행합니다. circRNA 시퀀싱은 의학 및 농업 연구 분야에서 점점 더 널리 사용되고 있습니다. 고처리량 시퀀싱을 기반으로 하고 주류 데이터베이스와 circRNA 식별 소프트웨어에 의존하여 프로젝트 종의 circRNA 정보를 분석하여 전사 조절에서 circRNA의 중요한 기능을 심층적으로 탐구합니다.
circRNA 연구 원료 솔루션
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분류 |
동물 카테고리 |
식물 카테고리 |
박테리아 및 곰팡이 범주 |
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샘플 유형 |
동물 조직/세포 |
셀 |
전혈 |
식물 조직 |
곰팡이 조직 |
배양된 박테리아와 균류 |
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RNA 추출 |
자기 비드법: 18605/18607/18606; 컬럼법: 19221/19211; 트리졸법: 10606/19202 |
자기 비드법: 18600/18604; 컬럼법: 19231 |
컬럼법: 19241; 트리졸법: 19201 |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
자기 비드 방법: 18534/18535/18537; 컬럼 방법: 19291ES/19292ES |
컬럼 방법: 19301(곰팡이는 리소자임 10403을 첨가해야 함) |
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rRNA 제거 |
RNase H 효소 제거: 12257; 3분 급속 제거: 12258(인간 유래 제거); 자기 비드법 제거: 12266(포유류 범용형)/12267 조류 범용형/12268 가금류/12269 얼룩말바리/12270 초파리/12275 굴/12278 편형동물/12285 벌/12286 황금구형거미/12289 진드기/12290 흰줄숲모기/12287 선충류 |
RNase H 효소제거 : 12257; 3분 급속제거 : 12258 (인간제거, 병원체에 적합) |
글로빈 제거를 포함한 RNase H 효소 제거: 12257 + 12806; 글로빈의 RNase H 효소 제거: 13572; 3분 급속 제거: 12258 + 12260 |
RNase H 효소 제거: 12254; 자기 비드법 제거: 12262 속씨식물 |
자기비드법 제거 : 12271 곰팡이 범용형 |
자기비드법 제거 : 12264 세균 범용형/12265 원핵생물 범용형 |
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선형 RNA 소화 |
선형 RNA 분자를 제거하기 위한 14606 RNase R |
선형 RNA 분자를 제거하기 위한 14606 RNase R |
선형 RNA 분자를 제거하기 위한 14606 RNase R |
선형 RNA 분자를 제거하기 위한 14606 RNase R |
선형 RNA 분자를 제거하기 위한 14606 RNase R |
선형 RNA 분자를 제거하기 위한 14606 RNase R |
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도서관 건설 |
사전 혼합되지 않은 RNA 라이브러리 구축 키트: 12308 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환) 사전 혼합 RNA 라이브러리 구축 키트: 12310 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환)/12340(액티노마이신 D, dUTP 없음) |
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메타전사체
[메타전사체 - 미세생태계 미세환경에서 활성 미생물의 역동적인 변화 포착]
메타전사체 시퀀싱: 특정 환경에서 모든 유전체의 전사 및 조절 규칙을 전반적인 수준에서 연구합니다. 미세 생태적 미세 환경의 모든 RNA를 연구 대상으로 삼아, 고처리량 시퀀싱을 결합하여 전사 수준에서 복잡한 미생물 군집의 변화를 연구하고 역할을 하는 활성 유전자를 채굴합니다.
메타트랜스크립톰 연구 원료 솔루션
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샘플 유형 |
배양된 박테리아와 균류 |
임상 샘플 |
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RNA 추출 |
컬럼 방법: 19301(곰팡이는 lywallzyme 10403을 추가해야 함) |
컬럼법: 19321(바이러스 DNA/RNA 추출); 자기 비드법: 18521(바이러스 DNA/RNA 추출); 18306(병원체 DNA/RNA 추출) |
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rRNA 제거 |
3분 급속제거 : 12258(인간 출처 제거) |
3분 급속제거 : 12258(인간 출처 제거) |
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도서관 건설 |
옵션 1. 총 RNA 라이브러리 구축: 12308ES 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환); 옵션 2. cDNA 효소 소화 라이브러리 구축: 13488ES cDNA 합성 모듈 + 12316ES 신속 효소 소화 라이브러리 구축 키트 |
옵션 1. 총 RNA 라이브러리 구축: 12308ES 듀얼 모드 RNA 라이브러리 구축 키트(Illumina 및 MGI와 호환); 옵션 2. cDNA 효소 소화 라이브러리 구축: 13488ES cDNA 합성 모듈 + 12316ES 신속 효소 소화 라이브러리 구축 키트 |
제품 추천
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제품 이름 |
카탈로그 번호 |
사양 |
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Hieff NGS TM EvoMax RNA 라이브러리 준비 키트(dUTP) |
12340ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM EvoMax RNA 라이브러리 준비 키트(dNTP) |
12341ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM Ultima 듀얼모드 RNA 라이브러리 준비 키트(Illumina 및 MGI) |
12308ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM Ultima 듀얼모드 RNA 라이브러리 준비 키트(사전 혼합 버전) |
12310ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM mRNA 분리 마스터 키트 V2 |
12629ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM MaxUp 인간 rRNA 고갈 키트(rRNA & ITS/ETS) |
12257ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM MaxUp rRNA 고갈 키트(식물) |
12254ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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Hieff NGS TM One-Step rRNA 제거 키트(Human,100-1,000ng) |
12258ES24/96 |
24톤/ 96톤 |
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히프 NGS TM MagSP rRNA 제거 키트(박테리아(G- 및 G+)) 정제 비드 포함 |
12264ES24/96 |
24톤/ 96톤 |