Liebe Freunde, fühlen Sie sich ratlos, wenn Sie beim Protein-Immunoblotting mit verschiedenen Loading Control- und Epitope Tagging Antibodies konfrontiert werden? Loading Control Proteine ​​werden in Organismen durch Housekeeping-Gene kodiert und in mehreren Geweben stabil exprimiert. Sie werden verwendet, um zu überprüfen, ob immunologische Experimente normal verlaufen, und als halbquantitativer Nachweisstandard für die Proteinexpression. Wie wählt man also die richtigen Ladekontrollantikörper aus? Sie können sich auf die folgenden Punkte beziehen.

I. Herkunft der Probenart

  1. Wählen Sie für Proben aus Säugetiergewebe oder -zellen im Allgemeinen β-Actin, α-Tubulin, GAPDH, Lamin-B, Histon H3, Na+/K+-ATPase.
  2. Wählen Sie für pflanzliche Proben im Allgemeinen Pflanzenaktin, Rubisco usw.
  3. Wählen Sie für andere, weniger erforschte Proben das entsprechende Protein als interne Referenz aus, indem Sie die entsprechende Literatur oder Datenbanken konsultieren.
II. Molekulargewicht des Zielproteins

Stellen Sie sicher, dass sich das Molekulargewicht des Zielproteins von dem der Ladekontrolle unterscheidet um mehr als 5 kDa, um Störungen während der Erkennung zu vermeiden. Wenn das Zielprotein beispielsweise 40 kDa groß ist, ist es nicht geeignet, β-Actin (42 kDa) als Ladekontrolle zu wählen. Erwägen Sie die Verwendung von GAPDH (36 kDa) oder β-Tubulin (55 kDa) als Ladekontrolle.

III. Expressionsort des internen Referenzproteins

Daher ist die Wahl der Ladesteuerung Protein variiert mit dem Proteinextraktionsort. Wenn Sie beispielsweise zytoplasmatische und nukleäre Proteine ​​getrennt extrahieren, anstatt Gesamtproteine, wählen Sie die Ladekontrolle Proteine, die an der entsprechenden Stelle exprimiert werden. Beispielsweise wird H3 stark und stabil im Zellkern exprimiert und theoretisch nicht im Zytoplasma. Daher sollte H3 für die Extraktion zytoplasmatischer Proteine ​​nicht als internes Referenzprotein verwendet werden. Wählen Sie stattdessen β-Actin, GAPDH, α-Tubulin usw., die im Zytoplasma als interne Referenzproteine ​​exprimiert werden.

Hinweis: Vermeiden Sie die folgenden Situationen bei der Verwendung Laden von Kontrollantikörpern

Subzelluläre Lokalisierung

Laden des Kontrollproteins

Molekulargewicht (KDa)

Hinweise

Zytoplasma, ganze Zelle

β-Aktin

42

Nicht für Kernextrakte geeignet. β-Actin ist ein Bestandteil von Chromatin-Remodeling-Komplexen; möglicherweise nicht geeignet für Situationen, in denen es zwischen den Forschungsteilnehmern erhebliche Altersunterschiede gibt.

α-Tubulin

55

Nicht geeignet für Situationen, in denen es erhebliche Altersunterschiede zwischen den Versuchsteilnehmern gibt. Die Expression von Tubulin verändert sich durch antimikrobielle und antimitotische Medikamente, daher ist es nicht geeignet, wenn Medikamente gegen Krebs und Pilzinfektionen hinzugefügt werden.

β-Tubulin

55

GAPDH

36

Zellhypoxie führt zu einer erhöhten Expression von GAPDH und ist daher für Sauerstoffstudien nicht geeignet. Faktoren wie Diabetes können zu einer erhöhten Expression von GAPDH führen.

Vinculin

117

Kann für Proteine ​​mit hohem Molekulargewicht herangezogen werden.

Mitochondrien

COXIV-Serie

15-17

Diese Proteinreihe konzentriert sich hauptsächlich auf 15-17 kDa. Wenn das Molekulargewicht des Zielproteins nahe daran liegt, sollten Sie andere Ladekontrollantikörper in Betracht ziehen.

HSP60

60

Kern

VDAC1/2

31-37

Diese Proteinreihe konzentriert sich hauptsächlich auf 31–37 kDa.

Lamin B1

66

Nicht geeignet für embryonale Stammzellen, nicht geeignet als Ladekontrolle in Apoptose-Experimenten.

PCNA

36

Nicht für nicht proliferierende Zellen geeignet.

TBP

33-43

TBP beträgt beim Menschen 37–43 kDa und bei Mäusen und Ratten 33–36 kDa und ist für Apoptose-Experimente nicht geeignet.

YY1

65-70

Histon H3

17

Die meisten Proteine ​​haben ein Molekulargewicht von etwa 17 kDa. Wenn das Molekulargewicht des Zielproteins nahe daran liegt, sollten Sie andere Loadong-Kontrollantikörper in Betracht ziehen.

Vollblut, Serum, Plasma

Transferrin

77

Die Expression wird durch bestimmte Krankheitszustände und Behandlungen, wie beispielsweise Retinsäure, beeinflusst.

Albumin

66

Der Gehalt ist extrem hoch, achten Sie bei WB-Experimenten auf eine Reduzierung der Probenbeladung.

Markierte Antikörper wirken besser, wenn sie gemeinsam verwendet werden

In Experimenten zur Untersuchung von Proteininteraktionen, wie etwa Pull-down, können Epitop-Tags mithilfe molekularbiologischer Methoden an den N- oder C-Terminus des Zielproteins fusioniert werden. Häufig verwendete Epitop-Tags sind His, HA, Myc und GST. Diese Epitop-Tags beeinflussen normalerweise nicht die biologische Aktivität und die intrazelluläre Lokalisierung des Zielproteins. Die Einführung von Epitop-Tags hat die wissenschaftliche Forschung und die industrielle Produktion erleichtert.

Epitop-Tag

Tag-Sequenz

Molekulargewicht (KDa)

HA Tag

: YPYDVPDYA

1.1

Myc Tag

EQKLISEEDL

1.2

Flag-Tag

DYKDDDDK

1

GST-Tag

-

26

GFP-Tag

-

26,9

V5 Tag

GKPIPNPLLGLDST

1.4

Hirsch

KETAAAKFERQHMDS

1.8

E-Tag

GAPVPYPDPLEPR

1.4

Produktinformationen

Typ

Produktname

Molekulargewicht (KDa)

Produktnummer

Kontrollantikörper wird geladen

β-Actin, Maus mAb

42

30101ES

β-Aktin, Kaninchen pAb

42

30102ES

GAPDH (Klon:1A6), Maus-mAb

36

30201ES

GAPDH, Kaninchen pAb

36

30202ES

α-Tubulin, Maus mAb

50-55

30304ES

β-Tubulin, Maus mAb

50-55

30301ES

β-Tubulin, Kaninchen pAb

50-55

30302ES

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