Introdução
01 Fundo
As esferas magnéticas foram inicialmente concebidas por John Ugelstad, um químico da Universidade Norueguesa de Ciência e Tecnologia. Após melhorias, as esferas magnéticas em nanoescala comumente vistas hoje em dia são diversas em tipos. Os princípios de separação variam dependendo das propriedades da superfície, mas seus materiais e estruturas básicas são semelhantes. A estrutura básica das esferas magnéticas é dividida em três camadas: a camada mais interna é o poliestireno, a segunda camada envolve a substância magnética Fe₃O₄ e a camada mais externa são os grupos funcionais modificados (como grupos carboxila) que podem se ligar a ácidos nucleicos. Diferentes grupos de superfície determinam as aplicações posteriores das esferas magnéticas, como extração de ácido nucleico, purificação e captura de biotina.

Figura 1. Diagrama esquemático da estrutura das esferas magnéticas
02 Princípio
Os sistemas comerciais de esferas magnéticas incluem esferas magnéticas, polietilenoglicol (PEG), íons de sal, etc. Os principais fatores que afetam a recuperação do DNA são PEG, tamanho e concentração do DNA, tempo de incubação, etc. Entre eles, o PEG é o fator decisivo. Altas concentrações de PEG e NaCl fazem com que o DNA perca sua camada de hidratação, se comprima em um formato esférico e expõe os grupos fosfato carregados negativamente. Por meio da formação de uma "ponte elétrica" por Na+ com os grupos carboxila na superfície das esferas magnéticas, o DNA é adsorvido nas esferas magnéticas. Após a remoção de PEG e NaCl, o efeito de hidratação quebra as ligações iônicas, e o DNA é purificado. DNAs de diferentes comprimentos podem ser seletivamente precipitados de acordo com as mudanças nas concentrações de PEG e sal.
figura2. Diagrama esquemático do princípio de adsorção de DNA por esferas magnéticas.
UMaplicações
As esferas magnéticas são altamente consideradas em sequenciamento de alto rendimento devido às suas características de alto rendimento e adequação para automação. Elas são amplamente utilizadas para extração, purificação e classificação de DNA na construção de bibliotecas de Sequenciamento de Próxima Geração (NGS).
01 Extração de ácido nucleico
No método de extração de esferas magnéticas, o tampão de lise celular, atuando como um desnaturante de proteína, pode lisar células e liberar ácidos nucleicos. As esferas magnéticas são carregadas positivamente e tendem a adsorver ácidos nucleicos carregados negativamente. Após a ligação, as impurezas são removidas por meio de lavagem e captura de campo magnético. Finalmente, os ácidos nucleicos são dissociados com um tampão de eluição. O DNA/RNA purificado pode ser usado para testes como PCR. Este método é amplamente aplicado na indústria de diagnóstico e suporta extração de ácido nucleico automatizada e de alto rendimento.
figura3. Diagrama esquemático do processo de extração de ácido nucleico por esferas magnéticas.
02 Purificação de DNA
O propósito da purificação de DNA é remover fragmentos não-alvo. As esferas magnéticas adsorvem preferencialmente fragmentos grandes. Ao controlar a proporção de esferas magnéticas, o DNA de tamanhos específicos pode ser adsorvido seletivamente, e pequenos fragmentos no sobrenadante podem ser descartados. Finalmente, o DNA alvo é eluído e recuperado. É frequentemente usado para remover pequenos fragmentos, como dímeros adaptadores/dímeros de primers, ou para enriquecimento de amostras.
figura 4. Diagrama esquemático do processo de purificação do DNA.
Durante o processo de purificação de DNA usando esferas magnéticas, haverá alguma perda de amostra. A eficiência de recuperação pode ser calculada pela fórmula: Eficiência de Recuperação = (Massa de DNA após purificação / Massa de DNA de Entrada) × 100%. Os dados mostram que a estabilidade do lote de esferas magnéticas de DNA
Tabela 1. Cálculo da eficiência de recuperação de esferas magnéticas
Amostra paralela | amostra | Entrada (ng) | Purificação de DNA(1,8×) | ||
umdepois da purificação(ng) | Porcentagem de recuperação % | umporcentagem média de recuperação | |||
Amostra paralela 1 | Um XP | 169,5 | 153,25 | 90,41% | 90,41% |
B-S-S | 159,75 | 94,25% | 94,50% | ||
C-S-S | 162 | 95,58% | |||
D-S | 158,75 | 93,66% | |||
Amostra paralela 2 | Um XP | 156 | 92,04% | 92,04% | |
B-S-S | 156,5 | 92,33% | 93,51% | ||
C-S-S | 160 | 94,40% | |||
D-S | 159 | 93,81% |
【NOTA】:Os dados de teste de esferas magnéticas foram obtidos de uma determinada empresa de biotecnologia em Xangai. Na tabela, A representa esferas magnéticas AMPure XP; B, C e D são três lotes diferentes de esferas magnéticas
03 ADN Seleção de tamanho duplo
O sequenciamento de próxima geração (NGS) requer que as bibliotecas NGS atinjam um comprimento específico. A triagem de fragmentos é usada para selecionar fragmentos alvo do DNA fragmentado. Aproveitando a característica de que as esferas magnéticas adsorvem preferencialmente fragmentos grandes, após a primeira rodada de adsorção de fragmentos grandes, as esferas magnéticas são descartadas e o sobrenadante é retido, com os fragmentos alvo permanecendo no sobrenadante. Na segunda rodada, as esferas magnéticas adsorvem os fragmentos alvo e, após descartar o sobrenadante, os fragmentos alvo são eluídos e recuperados.
Figura 5.Seleção de tamanho duplo de DNA Visão geral do processo
Para avaliar a precisão da classificação, os tamanhos dos fragmentos classificados em diferentes proporções de entrada de esferas magnéticas são geralmente detectados pelo instrumento Agilent 2100.
Sob uma proporção específica de esferas magnéticas, as distribuições de fragmentos de diferentes amostras devem ser concentradas na mesma posição. O efeito de classificação ideal é um único pico estreito e arredondado no topo. Devido às diferenças nos buffers entre diferentes fabricantes, as distribuições variarão sob uma proporção específica de esferas magnéticas. Antes do uso, é necessário consultar o manual de instruções para confirmar a proporção de classificação dos fragmentos alvo. Os dados mostram que sob a mesma proporção de classificação, os efeitos de classificação das esferas magnéticas
Tabela 2. Recuperação típica
amostra |
| Seleção de tamanho duplo(0,65×/0,2×) | ||
Entrada (ng) | Depois Seleção de tamanho duplo(ng) | Porcentagem de recuperação % | Média Porcentagem de recuperação | |
Um XP | 276,44 | 55,2 | 19,97% | 19,97% |
B-S-S | ||||
61,35 | 22,19% | 22,84% | ||
C-S-S | 65,4 | 23,68% | ||
D-S | 62,55 | 22,63% |
【nota】:Os dados de teste de esferas magnéticas foram obtidos de uma determinada empresa de biotecnologia em Xangai. Na tabela, A representa esferas magnéticas AMPure XP, enquanto B, C e D são três lotes diferentes de esferas magnéticas
Informações do produto
Hieff NGSTM As esferas de seleção de DNA são baseadas no princípio SPRI e combinadas com um sistema de buffer otimizado, sendo adequadas para classificação e purificação de fragmentos de DNA em bibliotecas de sequenciamento de última geração. Este produto é compatível com kits de construção de bibliotecas de várias marcas, e sua eficiência de recuperação de fragmentos e distribuição de tamanho de biblioteca são semelhantes às das esferas magnéticas XP. Vale a pena notar que o preço das esferas magnéticas
Tabela 3.Recomendações para Hieff NGSTM Produtos de esferas magnéticas da série
Classificação de magnético contas | Nome do produto | Número do produto | Tamanhos | Preço promocional(¥ yuan) | aplicações |
ADN contas magnéticas | 12601ES08 | 5 mL | 595 | Limpeza de DNA Seleção de tamanhos de DNA | |
12601ES56 | 60 mL | 3775 | |||
12601ES75 | 450 mL | 15715 | |||
Hieff NGSTM Contas de limpeza de DNA mais inteligentes | 12600ES08 | 5 mL | 835 | Purificação de pequenos fragmentos (>50 pb) | |
12600ES56 | 60 mL | 4555 | |||
12600ES75 | 450 mL | 17935 | |||
ARN contas magnéticas | 12602ES08 | 5 mL | 635 | Construção de biblioteca de RNA | |
12602ES56 | 60 mL | 2555 | |||
12602ES75 | 450 mL | 23135 | |||
12629ES24 | 24 T | 308 | Isolamento e purificação de mRNA. | ||
12629ES96 | 96 T | 1128 |