您是否正在寻找一种可靠的方法来检测 mRNA 体外转录过程中残留的 dsRNA?双链 RNA (dsRNA) ELISA 试剂盒就是您的最佳选择。然而,由于有几种商业试剂盒可供选择,需要注意的是,验证数据可能并不总是公开的,从而导致 dsRNA 检测不一致。这就是我们分享双链 RNA (dsRNA) ELISA 试剂盒验证报告的原因,该报告涵盖了特异性、精确度、准确性、灵敏度和耐用性。本报告可作为参考指南,用于验证针对特定实验条件和监管药典标准的 dsRNA 残留检测方法。请详细了解我们的验证报告 促进dsRNA检测的标准化。
双链 RNA(dsRNA)ELISA 钾它
背景:
双链RNA(dsRNA)ELISA试剂盒是用于检测mRNA体外转录过程中产生的残留dsRNA的试剂盒,本试剂盒采用双抗体夹心酶联免疫吸附试验(ELISA)的实验原理和生物素-链霉亲和素扩增体系,可灵敏地检测样本中残留的dsRNA。
汇总数据包含验证参数,涵盖特异性、精密度、准确度、灵敏度和耐久性。该报告可作为参考指南,敦促用户根据其特定实验条件验证 dsRNA 残留检测方法,并遵守监管药典标准。
材料和方法:
成套工具: 双链 RNA (dsRNA) ELISA 试剂盒:Cat#36717ES(
方法:实验所需的材料和程序步骤主要由
结果
- dsRNA 标准的线性
本报告针对所有四种不同类型的 dsRNA 标准制定了标准曲线,每种标准的长度为 300bp。这些标准包括 STD1,未修饰的 dsRNA;STD2,伪 UTP 修饰的 dsRNA;STD3,N1-Me-伪 UTP 修饰的 dsRNA;以及 STD4,5-OMe-UTP 修饰的 dsRNA。每种类型的 dsRNA 标准均表现出优异的稀释线性,R2 > 0.99,测量浓度的变异系数 (CV) 小于 10%,如表 1 至表 5 所示。
性病名称 | UTP 类型 | 稀释线性 (R2>0.99) | 简历 |
STD1 | 超五类 | 0.0156-1皮克/微升 | <10% |
STD2 | 尿苷三磷酸 | 0.0156-1皮克/微升 | <10% |
STD3 | N1-甲基-pUTP | 0.0312-1皮克/微升 | <10% |
STD4 | 5-甲基-UTP | 0.0625-1皮克/微升 | <10% |
表 1. 不同 dsRNA 标准的线性。
STD1 浓度n。 (皮克/微升) | 测量平均值 (皮克/微升) | 恢复 | 简历 |
1 | 1.0001 | 100.0% | 3.1% |
0.5 | 0.4994 | 99.9% | 2.4% |
0.25 | 0.2516 | 100.7% | 3.3% |
0.125 | 0.1227 | 98.1% | 0.5% |
0.0625 | 0.0640 | 102.5% | 3.2% |
0.0312 | 0.0309 | 99.2% | 1.3% |
0.0156 | 0.0157 | 100.4% | 3.2% |
0 | / | / | / |
表 2.恢复和简历 稀释的 STD1
STD2 浓度n。 (皮克/微升) | 测量平均值 (皮克/微升) | 恢复 | 简历 |
1 | 1.0001 | 100.0% | 0.7% |
0.5 | 0.4994 | 99.9% | 0.1% |
0.25 | 0.2514 | 100.6% | 0.9% |
0.125 | 0.1232 | 98.6% | 2.5% |
0.0625 | 0.0635 | 101.6% | 1.1% |
0.0312 | 0.0312 | 99.9% | 0.5% |
0.0156 | 0.0155 | 99.6% | 0.0% |
0 | / | / | / |
表 3. 回收率和 CV 稀释的 STD2
STD3 浓度 (皮克/微升) | 测量平均值 (皮克/微升) | 恢复 | 简历 |
2 | 2.0031 | 100.2% | 1.6% |
1 | 0.9880 | 98.8% | 2.4% |
0.5 | 0.5188 | 103.8% | 1.2% |
0.25 | 0.2383 | 95.3% | 2.2% |
0.125 | 0.1242 | 99.4% | 0.1% |
0.0625 | 0.0629 | 100.7% | 1.8% |
0.0312 | 0.0361 | 115.7% | 1.6% |
0 | / | / | / |
表 4. 回收率和 CV 稀释的 STD3
STD4 浓度 (皮克/微升) | 测量平均值 (皮克/微升) | 恢复 | 简历 |
4 | 4.0096 | 100.2% | 1.9% |
2 | 1.9940 | 99.7% | 0.7% |
1 | 0.9977 | 99.8% | 0.1% |
0.5 | 0.5108 | 102.2% | 0.1% |
0.25 | 0.2454 | 98.2% | 5.6% |
0.125 | 0.1207 | 96.5% | 2.8% |
0.0625 | 0.0624 | 99.9% | 0.3% |
0 | / | / | / |
表 5. 回收率和 CV 稀释的 STD4
-
特异性
- 使用 dsRNA、ssRNA、dsDNA 和 ssDNA 进行特异性分析。
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- 特异性不受 dsRNA 长度的影响。
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-
一个准确度
添加 0.5 pg/μL STD1 对已知 dsRNA 含量为 0.36 pg/μL 的 mRNA 样品,以 3 种不同的体积比(1:1、1:20、1:250)进行加标回收率测试,所有加标回收率均在 80-120% 范围内。
加标回收率计算如下:加标 恢复 速率=(测量 专注 后 加标量×总量 体积 的 尖刺 样品−测量 专注 的 这 样本×总数 体积 的 这 样品)/(理论 专注 的 这 峰值×体积 的 这 峰值)×100%
示例 | STD1/样品体积比 | 测量 dsRNA (皮克/微升) | 长钉 恢复 速度 |
样本 (TS) | / | 0.36 | / |
TS+0.5pg/μL STD1 | 1:1 | 0.769 | 81% |
TS+0.5pg/μL STD1 | 1:20 | 0.777 | 82% |
TS+0.5pg/μL STD1 | 1:250 | 0.803 | 82% |
表 6. 加标回收率 分析
-
精确
- 批内精密度
对四份 dsRNA 标准样品分别进行高、中、低三个浓度水平的实验,在一次实验中,每个浓度样品进行了八次重复测试,结果显示变异系数 (CV) 低于 15% 表明具有良好的批内精度。
STD1 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
1 | 8 | 1.0002 | 3.11% |
0.125 | 8 | 0.1230 | 0.46% |
0.0156 | 8 | 0.0164 | 3.18% |
STD2 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
1 | 8 | 1.0001 | 0.65% |
0.125 | 8 | 0.1231 | 2.46% |
0.0156 | 8 | 0.0162 | 0.02% |
STD3 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
2 | 8 | 2.0022 | 1.58% |
0.25 | 8 | 0.2444 | 2.17% |
0.0312 | 8 | 0.0328 | 1.64% |
STD4 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
8 | 8 | 8.0803 | 0.27% |
1 | 8 | 0.9650 | 0.12% |
0.125 | 8 | 0.1322 | 2.76% |
表 7. 批内精密度分析
- 批间精密度
使用来自 3 个 批次。在每次实验中,选择高、中、低浓度,对四个 dsRNA 标准样品分别进行三次测试,重复八次。因此,每次实验获取 24 个数据点 浓度水平,然后进行变异系数(CV)分析。结果表明,标准品各浓度的CV均低于15%。
STD1 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 独立测试/重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
1 | 3/8 | 1.0007 | 2.38% |
0.125 | 3/8 | 0.1186 | 3.20% |
0.0156 | 3/8 | 0.0173 | 1.27% |
STD2 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 独立测试/重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
1 | 3/8 | 0.9987 | 0.09% |
0.125 | 3/8 | 0.1269 | 1.06% |
0.0156 | 3/8 | 0.0151 | 0.52% |
STD3 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 独立测试/重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
2 | 3/8 | 2.0012 | 2.37% |
0.25 | 3/8 | 0.2415 | 0.14% |
0.0312 | 3/8 | 0.0330 | 1.81% |
STD4 | |||
理论 浓度 (皮克/微升) | 独立测试/重复 | 测量平均值 (pg/μL) | 简历 |
8 | 3/8 | 7.9735 | 1.89% |
1 | 3/8 | 1.0225 | 0.13% |
0.125 | 3/8 | 0.1227 | 5.63% |
表 8. 批间精密度分析
-
敏感度
- 详细程度
检测限 成套工具 是将空白值的平均值加上两倍的标准差而得出的。通过测量24个空白的OD,计算其平均值和标准差,然后将这些值应用到拟合曲线上,可以得到相应的检测限 得到。
| 外径 |
| ||
双链RNA 标准 | 空白平均值 | 标准差 的空白 | 空白平均值+2SD | 详细程度 |
STD1 | 0.016 | 0.00048 | 0.01696 | ≤0.001pg/μL |
STD2 | 0.016 | 0.00072 | 0.01744 | ≤0.001pg/μL |
STD3 | 0.034 | 0.00119 | 0.03638 | ≤0.001pg/μL |
STD4 | 0.115 | 0.00290 | 0.1208 | ≤0.01pg/μL |
表 9. LOD 分析
- 最低定量限
数量限制 成套工具 是通过将标准曲线的最低浓度点稀释到更低的水平来建立的,确保最低浓度下的 CV < 20%,从而定义定量阈值。 LOQ如下。
双链RNA 标准 | 最低定量限 | 重复 | 简历(%) | 恢复 (%) |
STD1 | 0.0156 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
STD2 | 0.0312 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
STD3 | 0.0156 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
STD4 | 0.125 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
-
德耐用性
- 抗IVT材料干扰
这次测试 旨在评估添加到 信使核糖核酸 用该试剂盒对样本的 dsRNA 进行检测。
将特定浓度的 T7 RNA 聚合酶、RNAse 抑制剂、IPPA(无机焦磷酸酶)、DNase I、VCE(痘苗加帽酶)、2'-O-甲基转移酶 (MT)、1×IVT 缓冲液和 1mM 柠檬酸钠添加到提供的 mRNA 样本中,然后利用 STD3 用于标准曲线制备和样品测试,可以评估该试剂盒检测这些样品中 dsRNA 含量的能力 样品。结果表明,八种不同的酶和缓冲液的存在不会影响 dsRNA 的准确检测。此外,观察到的回收率在 80% 至 120% 的范围内。
IVT 材料 | 双链RNA 测量值 (pg/μL) | 恢复 |
没有任何 | 0.6057 | 100% |
T7 RNA聚合酶(15μg/mL) | 0.5411 | 89.32% |
小鼠 RNase 抑制剂 (27.5μg/mL) | 0.5142 | 84.88% |
无机焦磷酸酶(IPPA 10μg/mL) | 0.7132 | 117.7% |
脱氧核糖核酸酶 I (13.75 μg/mL) | 0.6077 | 100.32% |
痘苗加帽酶(10μg/mL) | 0.6563 | 108.3% |
2´-O-甲基转移酶 (10μg/mL) | 0.5776 | 95.4% |
1×IVT缓冲器 | 0.5003 | 82.6% |
1毫米 柠檬酸钠 | 0.6251 | 103.2% |
表 11. 添加 IVT 材料的稀释 STD3 的回收率
- 温度d耐用性
这些工具包分别存放在 4°C 和 37°C 检测7天后dsRNA标准品的浓度变化,结果显示其变化均在20%以内。
双链RNA 标准 | 双链RNA 测量值(pg/μL)第 0 天 | 差异 4°C 下 7 天后 |
STD1 | 1 | 10% |
STD2 | 1 | 5% |
STD3 | 2 | 7% |
STD4 | 4 | 11% |
双链RNA 标准 | 双链RNA 测量值 (pg/μL) | 差异 37°C 下放置 7 天后 |
STD1 | 1 | 18% |
STD2 | 1 | 4% |
STD3 | 2 | 5% |
STD4 | 4 | 8% |
表12. 温度耐久性分析
相关产品:
产品名称 | 库存单位 | 规格 |
双链 RNA(dsRNA)ELISA 试剂盒 | 36717ES | 48吨/96吨 |
CleaScrip™ T7 RNA 聚合酶(低 ds RNA,250 U/μL) | 10628ES | 10/100 库拉索 |
T7 RNA聚合酶 GMP级(250 U/μL) | 10625ES | 10/100 库拉索 |
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参考:
- ICH,2022:分析方法验证 Q2,草案版本。
- 国家药品监督管理局,2007年:《生物制品质量控制分析方法验证评价通则》
- 国家药典委员会(ChPC),2020年版:《中国药典》第四部:生物样品定量分析方法验证指导原则