E. coli Værtscelle DNA-restdetektionskit (2G)

Kvalifikationsoversigt (Kat. nr.: 41308ES60)

  1. Baggrund

Dataene opsummeret i denne rapport er udført af Yeasen Biotechnology for 'E.coli Host Cell DNA Residue Detection Kit (2G) produkt. Opsummeringsdataene er kun til brug for brugerens reference, og brugeren skal verificere værtscelle-resten DNA-metoden ved at bruge deres egne prøver til at bekræfte, at metoden kan opfylde brugerens krav. Alle laboratorier, der bruger dette sæt, anbefales at verificere følgende parametre: Linearitet, Område, Nøjagtighed, Præcision, Kvantificeringsgrænse, Specificitet og Robusthed.

Yeasen Biotechnology kan levere den detaljerede kvalifikationsrapport for dette sæt. Hvis brugeren bruger denne rapport, er det kun egnetheden (som inkluderede Precision, Nøjagtighed og specificitet) skal verificeres.

  1. Eksperimentelle materialer og metoder

2.1 E.coli værtscelle DNA-restdetektionskit (2G), Leverandør: Yeasen, Kat.nr.: 41308ES60.

2.2 MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit, Leverandør: Yeasen, Kat.nr.: 18461ES60.

2.3 National standard for E.coli DNA indhold: Kat. 270027, parti nr.: 201101, koncentration: 96,2 μg/mL, opbevaringstilstand: -70 ℃, købt fra: National Institutes for Food and Drug Control.

2.4 Originale data: den elektroniske version blev registreret i 'Eksperimentel rapport' underfilen til den overordnede fil 'E.coli Host Cell DNA Residue Detection Kit (2G)'.

2.5 Metoder: Materialerne og operationsmetoderne, der blev brugt til eksperimentet, blev som udgangspunkt produceret eller indstillet af Yeasen Biotechnology, som blev vurderet og verificeret i lang tid, udviklingen og fremstillingen af ​​kittet er fulgt efter ISO 13485-systemet.

  1. Kvalifikationens indhold og resultater

3.1 Detektionsområde

Sættets lineære område var 30 fg/μL~300 pg/μL med R2=1, og amplifikationseffektiviteten var 101,74% med CV <15% for hver koncentrationsanalyse.

Figur 1 E.coli DNA (2G) qPCR standardkurve

3.2 Nøjagtighed

3.2.1 Afvigelse fra National standard for E.coli DNA indhold

E.coli DNA-referencematerialet i hver batch af sættet blev kalibreret under anvendelse af den nationale standard for E.coli-DNA-indhold. Yeasen DNA-referencemateriale var som udgangspunkt fri for afvigelser fra den nationale standard for E.coli DNA-indhold kalibreringskurve, og afvigelsen af ​​assayværdien var <5%.

3.2.2 Recovery

3.2.2.1 Eksperiment til gendannelse af tomprøvespikning

Prøver af E.coli DNA-standarder i høje og lave koncentrationer: 300 pg/μL, 3 pg/μL og 30 fg/μL blev fremstillet henholdsvis og analyseret efter ekstraktion ved hjælp af den magnetiske perlemetode til rest-DNA Sample Pre-treatment Kit (2 ekstraktionsreplikater blev udført for hver analyseprøve, og gentagelser blev udført for hver analyseprøve og 3 gentagelser), og CV'er blev analyseret.

For forskellige koncentrationer af DNA-prøver varierede genfindingerne fra 70% til 130%, og CV'erne var alle <20%.

Prøvetype

Teoretisk koncentration

Udtræk 1 middelværdi

Uddrag 2 middelværdi

Gennemsnitlig koncentration

CV

Genopretning

Blank prøve

/

/

/

/

/

/

Genopretningsprøve 1

300 pg/μL

250,56 pg/μL

262,11 pg/μL

256,33 pg/μL

4,41 %

85,44 %

Genopretningsprøve 2

3 pg/μL

2,29 pg/μL

2,56 pg/μL

2,42 pg/μL

7,09 %

80,77 %

Genopretningsprøve 3

30 fg/μL

33,62 fg/μL

32,61 fg/μL

33.12 fg/μL

14,28 %

110,39 %

Tabel 1 Blank prøve Spiking Recovery

3.2.2.2 Simuleret prøvespikningsgendannelseseksperiment

Prøver af samme koncentration (3 pg/μL E.coli DNA) blev ekstraheret (2 ekstraktionsreplikater blev udført for hver prøve, og 3 assay-replikater blev udført for hver ekstraktion) med 5 forskellige baggrundsopløsninger (højt protein, høj nukleinsyre, høj og lav pH, højt salt), og prøvegenvindinger og CV'er blev analyseret.

DNA-prøvegenfindelser for forskellige baggrundsopløsninger varierede fra 70 % til 130 %, med alle CV'er <20 %.

Prøvetype

Teoretisk koncentration

Udtræk 1 middelværdi

Uddrag 2 middelværdi

Gennemsnitlig koncentration

CV

Genopretning

Grundlæggende prøve

/

/

/

/

/

/

Højt proteinindhold

3 pg/μL

2,25

2.23

2.24

1,09 %

74,74 %

Høj nuklear syre

3,93

3,96

3,95

1,56 %

131,52 %

Højt saltindhold

2,69

2,67

2,68

2,63

89,20 %

Høj pH

2,90

3,67

3.29

13,82 %

109,55 %

Lav pH

2,77

2,87

2,82

3,41 %

94,01 %

Tabel 2 Grundlæggende prøve gendannelse af spikes

3.3 Præcision

3.3.1 Gentagelighed

Gentag analysen 10 gange for E.coli DNA-standarder ved en koncentration på 3 pg/μL med en CV <15%.

Gentagelser

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

Betyde

CV

Detektionsværdi (fg/μL)

3.16

2,87

2,97

2,86

2,81

2,97

3.14

3.21

3.14

3.1

3.02

4,78 %

Tabel 3 Gentagelighedsresultater

3.3.2 Mellempræcision

Tre forsøgsledere testede uafhængigt E.coli DNA-standardprøver ved høje og lave koncentrationer: 300 pg/μL, 3 pg/μL og 30 fg/μL, og tre replikater blev udført for hver koncentration, og CV'erne for alle ni opnåede data var <15%.

Exp

Faktisk koncentration

Teoretisk koncentration

E.coli DNA (2G)

300 pg/uL

3 pg/uL

30 fg/uL

Exp 1

Bestemmelse 1

295,65

3.22

26,90

Bestemmelse 2

287,71

3.24

32.00

Bestemmelse 3

300,23

3.17

27,50

Exp 2

Bestemmelse 4

306,06

3.13

37.30

Bestemmelse 5

299,76

3.02

32,70

Bestemmelse 6

299.63

3.02

34.00

Exp 3

Bestemmelse 7

266,70

3.01

35,90

Bestemmelse 8

272,89

3,09

40,70

Bestemmelse 9

276,51

3.01

35,20

/

Betyde

289,46

3.10

33,60

/

CV

4,89 %

3,02 %

13,18 %

Tabel 4 Resultater for middelpræcision

3.4 Specificitet

Interferensen af ​​cellulært genomisk DNA, der almindeligvis anvendes i produktionen af ​​biologiske lægemidler, blev vurderet for interferens med E.coli DNA-detektionsreagenser, og interferensgruppen overlappede med kontrolgruppen, og der blev ikke set nogen interferens (figuren nedenfor viser, i rækkefølge, interferensdataene for HEK293, Vero og CHO genomiske DNA'er med E.coli DNA-detektionsreagenser).

Figur 2 Interferenseksperimentresultater

3.5 Kvantificeringsgrænse

E.coli DNA blev påvist ved 50 fg/μL, 40 fg/μL, 30 fg/μL, 10 fg/μL og 5 fg/μL, med 10 replikater for hver koncentration. Resultaterne viste, at CV var <20 % ved koncentrationer på 30 fg/μL og derover. Det vil sige, at grænsen for kvantificering af E.coli-værtscelle-DNA-restdetektionskit (2G) var 30 fg/μL.

Gentagelser

Test vare

E.coli DNA (2G) (fg/μL)

Mængde

Genberegningsforhold

1

29,43

98,09 %

2

29,51

98,35 %

3

32.04

106,79 %

4

26.07

86,89 %

5

34.06

113,53 %

6

33,54

111,79 %

7

26,95

89,82 %

8

27,38

91,26 %

9

27.04

90,13 %

10

26.10

87,02 %

Betyde

29.21

/

CV

10,40 %

/

Figur 3 30fg/μL E.coli DNA (2G) qPCR-testresultat

3.6 Robusthed

Dette sæt er blevet testet og er velegnet til, men ikke begrænset til, følgende instrumenter:

Sælger

Instrumentmodeller

Forstærkningseffektivitet

R2

Kvantificeringsgrænse (fg/μL)

CV

Termo

ABI 7500

101,74 %

1

30

13,30 %

Termo

ABI QuantStudio5

100,46 %

1

30

12,40 %

Bio-Rad

CFX96

99,20 %

0,999

30

13,76 %

Shanghai Hongshi

SLAN

100,40 %

0,999

30

11,67 %

Tabel 5 Instrumentets egnethedstestresultater

3.7 Stabilitet

3.7.1 Fryse-tø stabilitet

E.coli værtscelle DNA-restdetektionskit (2G) blev testet ved gentagen frysning og optøning 10 gange, og sættets ydeevne blev ikke påvirket.

Testindikatorer

Fryse-tø-tider

Parameter

T0 tid

Frys-tø 10 gange

Standard kurveparameter

Forstærkningseffektivitet

98,23 %

100,20 %

R2

1

0,999

Kvantificeringsgrænse (30 fg/μL)

CV

15,07 %

9,66 %

Tabel 6 Fryse-tø stabilitet resultatanalyse

3.7.2 Accelereret stabilitet

E.coli værtscelle DNA-restdetektionskit (2G) blev opbevaret ved 2~8°C i henholdsvis 30 dage og 37°C i 14 dage. Ingen af ​​sættets ydeevne blev påvirket.

Testindikatorer

Accelerationstemperatur og tid

Parameter

Forsøg 1

Forsøg 2

T0 tid

2~8℃ 30 dage

T0 tid

37℃ 14 dage

Standard kurveparameter

Forstærkningseffektivitet

97,77 %

99,81 %

98,39 %

98,65 %

R2

1

1

1

1

Kvantificeringsgrænse (30 fg/μL)

CV

11,04 %

13,79 %

9,55 %

14,55 %

Tabel 7 Accelereret stabilitetsresultatanalyse

  1. 4.Reference

4.1 Chinese Pharmacopoeia Commission (ChPC). Farmakopé for Folkerepublikken Kina (Vol Ⅲ) [S]. Beijing: China Medical Science and Technology Press, s. 542-543, 2020.

4.2 NMPA, 2007: Generelle principper for teknisk gennemgang af analysemetodevalidering til kvalitetskontrol af biologiske produkter.

4.3 ICH(2022)《Analytisk metodevalidering Q2》, udkast til version.

Bestillingsinformation

Forespørgsel