Leder du efter en pålidelig måde at detektere resterende dsRNA under mRNA in vitro transkription? Se ikke længere end det dobbeltstrengede RNA (dsRNA) ELISA Kit. Men med flere tilgængelige kommercielle kits er det vigtigt at bemærke, at valideringsdata muligvis ikke altid er offentligt tilgængelige, hvilket fører til inkonsekvens i dsRNA-detektion. Det er derfor, vi deler vores valideringsrapport af The Double-stranded RNA (dsRNA) ELISA Kit, der dækker specificitet, præcision, nøjagtighed, sensitivitet og holdbarhed. Denne rapport tjener som en referencevejledning til at validere dsRNA-restpåvisningsmetoder, der er skræddersyet til specifikke eksperimentelle forhold og regulatoriske farmakopéstandarder. Læs mere om vores valideringsrapport at fremme standardiseringen af dsRNA-detektion.
Dobbeltstrenget RNA (dsRNA) ELISA Kdet
Baggrund:
Dobbeltstrenget RNA (dsRNA) ELISA-kittet er et reagenskit designet til at detektere det resterende dsRNA produceret under mRNA in vitro-transkriptionsprocessen. Ved at anvende det eksperimentelle princip med dobbelt antistof sandwich enzym-linked immunosorbent assay (ELISA) og biotin-streptavidin amplifikationssystemet tilbyder dette kit følsom påvisning af resterende dsRNA i prøver.
Opsummeringsdataene indeholder valideringsparametre, der dækker specificitet, præcision, nøjagtighed, følsomhed og holdbarhed. Rapporten fungerer som en referencevejledning, der opfordrer brugerne til at validere dsRNA-restpåvisningsmetoder, der er skræddersyet til deres specifikke eksperimentelle forhold og overholder lovmæssige farmakopéstandarder.
Materialer og metoder:
Kit: Dobbeltstrenget RNA (dsRNA) ELISA Kit: Kat #36717ES (YEASEN). Sættet indeholder fire forskellige typer af dsRNA-standardprøver. Brugere har mulighed for at vælge den standardprøvetype, der stemmer overens med deres specifikke proces til generering af standardkurven, og derved undgår nødvendigheden af at forberede og teste alle prøver.
Metoder: Materialerne og de proceduremæssige trin, der er afgørende for eksperimentet, er overvejende specificeret af Yeasen Biotechnology. Sættet har gennemgået omfattende test og evaluering, hvilket sikrer, at dets ydeevne opfylder de fastsatte krav i ICH Q2(R1) og 2020-udgaven af den kinesiske farmakopé, del fire "9101 Analytical Method Validation Guidelines".
Resultater
- Linearitet af dsRNA-standarder
Denne rapport har udviklet standardkurver for alle fire forskellige typer af dsRNA-standarder, hver med en længde på 300 bp. Disse standarder inkluderer STD1, umodificeret dsRNA; STD2, Pseudo-UTP modificeret dsRNA; STD3, N1-Me-Pseudo-UTP modificeret dsRNA; og STD4, 5-OMe-UTP modificeret dsRNA. Hver type dsRNA-standard udviser fremragende linearitet af fortynding med R2 > 0,99 og en variationskoefficient (CV) af målt koncentration på mindre end 10 % vist i tabel 1 til tabel 5.
STD navn | UTP type | Linearitet af fortynding (R2>0,99) | CV |
STD1 | UTP | 0.0156-1 pg/μL | <10 % |
STD2 | pUTP | 0,0156-1 pg/μL | <10 % |
STD3 | N1-Mig-pUTP | 0,0312-1 pg/μL | <10 % |
STD4 | 5-OMe-UTP | 0,0625-1 pg/μL | <10 % |
Tabel 1. Lineariteten af forskellige dsRNA-standarder.
STD1 koncn. (pg/μL) | Målt middelværdi (pg/μL) | Genopretning | CV |
1 | 1.0001 | 100,0 % | 3,1 % |
0,5 | 0,4994 | 99,9 % | 2,4 % |
0,25 | 0,2516 | 100,7 % | 3,3 % |
0,125 | 0,1227 | 98,1 % | 0,5 % |
0,0625 | 0,0640 | 102,5 % | 3,2 % |
0,0312 | 0,0309 | 99,2 % | 1,3 % |
0,0156 | 0,0157 | 100,4 % | 3,2 % |
0 | / | / | / |
Tabel 2.Opsvinget og CV af fortyndet STD1
STD2 koncn. (pg/μL) | Målt middelværdi (pg/μL) | Genopretning | CV |
1 | 1.0001 | 100,0 % | 0,7 % |
0,5 | 0,4994 | 99,9 % | 0,1 % |
0,25 | 0,2514 | 100,6 % | 0,9 % |
0,125 | 0,1232 | 98,6 % | 2,5 % |
0,0625 | 0,0635 | 101,6 % | 1,1 % |
0,0312 | 0,0312 | 99,9 % | 0,5 % |
0,0156 | 0,0155 | 99,6 % | 0,0 % |
0 | / | / | / |
Tabel 3. Gendannelsen og CV af fortyndet STD2
STD3 konn. (pg/μL) | Målt middelværdi (pg/μL) | Genopretning | CV |
2 | 2,0031 | 100,2 % | 1.6 % |
1 | 0,9880 | 98,8 % | 2,4 % |
0,5 | 0,5188 | 103,8 % | 1,2 % |
0,25 | 0,2383 | 95,3 % | 2,2 % |
0,125 | 0,1242 | 99,4 % | 0,1 % |
0,0625 | 0,0629 | 100,7 % | 1,8 % |
0,0312 | 0,0361 | 115,7 % | 1,6 % |
0 | / | / | / |
Tabel 4. Gendannelsen og CV af fortyndet STD3
STD4 konn. (pg/μL) | Målt middelværdi (pg/μL) | Genopretning | CV |
4 | 4,0096 | 100,2 % | 1,9 % |
2 | 1,9940 | 99,7 % | 0,7 % |
1 | 0,9977 | 99,8 % | 0,1 % |
0,5 | 0,5108 | 102.2 % | 0,1 % |
0,25 | 0,2454 | 98,2 % | 5,6 % |
0,125 | 0,1207 | 96,5 % | 2,8 % |
0,0625 | 0,0624 | 99,9 % | 0,3 % |
0 | / | / | / |
Tabel 5. Gendannelsen og CV af fortyndet STD4
-
Specificitet
- Specificitetsanalyse med dsRNA, ssRNA, dsDNA og ssDNA.

- Specificitet blev ikke påvirket af længden af dsRNA'er.

-
ENnøjagtighed
Tilføjelse af 0,5 pg/μL STD1 til en kendt mRNA-prøve med et dsRNA-indhold på 0,36 pg/μL blev udført i tre forskellige volumenforhold (1:1, 1:20, 1:250). I alle tilfælde faldt spidsgenvindingsraterne inden for intervallet 80-120 %.
Spidsgenvindingshastigheden beregnes som følger: Spike Genopretning Rate=(Målt koncentration efter spiking×Total bind af spidse prøve-målt koncentration af de stikprøve×I alt bind af de prøve)/(Teoretisk koncentration af de spike×Volume af de spids) × 100 %
Prøver | Volumenforhold af STD1/prøve | Målt dsRNA (pg/μL) | Spike Genopretning Sats |
Eksempel (TS) | / | 0,36 | / |
TS+0,5pg/μL STD1 | 1:1 | 0,769 | 81 % |
TS+0,5pg/μL STD1 | 1:20 | 0,777 | 82 % |
TS+0,5pg/μL STD1 | 1:250 | 0.803 | 82 % |
Tabel 6. Spikegenvindingshastigheden analyse
-
Præcision
- Intra-assay præcision
Eksperimenter blev udført på tre koncentrationsniveauer (høj, medium og lav) for hver af de fire dsRNA-standardprøver. Inden for et enkelt eksperiment gennemgik hver koncentrationsprøve otte gentagne tests. Resultaterne viser, at variationskoefficienten (CV) er under 15 % indikerer en god intra-assay præcision.
STD1 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Replikerer | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
1 | 8 | 1.0002 | 3,11 % |
0,125 | 8 | 0,1230 | 0,46 % |
0,0156 | 8 | 0,0164 | 3,18 % |
STD2 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Replikerer | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
1 | 8 | 1.0001 | 0,65 % |
0,125 | 8 | 0,1231 | 2,46 % |
0,0156 | 8 | 0,0162 | 0,02 % |
STD3 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Replikerer | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
2 | 8 | 2,0022 | 1,58 % |
0,25 | 8 | 0,2444 | 2,17 % |
0,0312 | 8 | 0,0328 | 1,64 % |
STD4 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Replikerer | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
8 | 8 | 8,0803 | 0,27 % |
1 | 8 | 0,9650 | 0,12 % |
0,125 | 8 | 0,1322 | 2.76 % |
Tabel 7. Intra-assay præcisionsanalyse
- Inter-assay præcision
Tre eksperimenter blev udført ved hjælp af kits fra 3 partier. I hvert eksperiment blev høje, mellemstore og lave koncentrationer valgt og testet tre gange for hver af de fire dsRNA-standardprøver med otte replikater. Derfor blev der indsamlet 24 datapunkter ved hver koncentrationsniveau, som derefter blev brugt til analyse af variationskoefficient (CV). Resultaterne viser, at CV for hver koncentration af standarderne var under 15%.
STD1 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Uafhængige tests/replikater | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
1 | 3/8 | 1,0007 | 2,38 % |
0,125 | 3/8 | 0,1186 | 3,20 % |
0,0156 | 3/8 | 0,0173 | 1,27 % |
STD2 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Uafhængige tests/replikater | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
1 | 3/8 | 0,9987 | 0,09 % |
0,125 | 3/8 | 0,1269 | 1,06 % |
0,0156 | 3/8 | 0,0151 | 0,52 % |
STD3 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Uafhængige tests/replikater | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
2 | 3/8 | 2,0012 | 2,37 % |
0,25 | 3/8 | 0,2415 | 0,14 % |
0,0312 | 3/8 | 0,0330 | 1,81 % |
STD4 | |||
Teoretisk konk. (pg/μL) | Uafhængige test/replikater | Målt gennemsnit (pg/μL) | CV |
8 | 3/8 | 7,9735 | 1,89 % |
1 | 3/8 | 1,0225 | 0,13 % |
0,125 | 3/8 | 0.1227 | 5,63 % |
Tabel 8. Præcisionsanalyse mellem assays
-
Følsomhed
- LOD
Detektionsgrænsen for sæt bestemmes ved at lægge to gange standardafvigelsen til middelværdien af blankværdierne. Ved at måle OD for 24 blindprøver, beregne deres middelværdi og standardafvigelse og derefter anvende disse værdier på den tilpassede kurve, den tilsvarende detektionsgrænse opnås.
| OD |
| ||
dsRNA Standard | Middel af Blank | SD af Blank | Gennemsnit af Blank+2SD | LOD |
STD1 | 0,016 | 0,00048 | 0,01696 | ≤0,001 pg/μL |
STD2 | 0,016 | 0,00072 | 0,01744 | ≤0,001 pg/μL |
STD3 | 0,034 | 0,00119 | 0,03638 | ≤0,001 pg/μL |
STD4 | 0,115 | 0,00290 | 0,1208 | ≤0,01pg/μL |
Tabel 9. LOD-analyse
- LOQ
Den kvantitative grænse for sæt etableres ved at fortynde standardkurvens laveste koncentrationspunkt til endnu lavere niveauer, hvilket sikrer en CV < 20 % ved den laveste koncentration, hvorved den kvantitative tærskel defineres. LOQ er som følgende.
dsRNA Standard | LOQ | Replikerer | CV(%) | Genopretning (%) |
STD1 | 0,0156 pg/μL | 24 | <10 % | 80~120 % |
STD2 | 0,0312 pg/μL | 24 | <10 % | 80~120 % |
STD3 | 0,0156 pg/μL | 24 | <10 % | 80~120 % |
STD4 | 0,125 pg/μL | 24 | <10 % | 80~120 % |
-
Dholdbarhed
- Anti-interferens på IVT-materialer
Denne test havde til formål at vurdere virkningen af forskellige enzymer, buffere osv., der tilsættes til mRNA prøve på dsRNA-detektion af sættet.
Tilføjelse af specifikke koncentrationer af T7 RNA polymerase, RNAse inhibitor, IPPA (uorganisk pyrophosphatase), DNase I, VCE (vaccinia capping enzym), 2'-O-Methyltransferase (MT), 1×IVT buffer og 1mM natriumcitrat til en medfølgende mRNA prøve og efterfølgende anvendelse af STD3 til både standardkurveforberedelse og prøvetestning muliggjorde evalueringen af sættets evne til at detektere dsRNA-indhold i disse prøver. Resultaterne viser, at tilstedeværelsen af otte forskellige enzymer og buffere ikke påvirkede den nøjagtige påvisning af dsRNA. Derudover faldt de observerede genvindingsrater inden for intervallet 80 % til 120 %.
IVT materialer | dsRNA Målt (pg/μL) | Genopretning |
Ingen | 0,6057 | 100 % |
T7 RNA-polymerase (15 μg/mL) | 0,5411 | 89,32 % |
Murin RNase-hæmmer (27,5 μg/mL) | 0,5142 | 84,88 % |
Uorganisk pyrophosphatase (IPPA 10μg/mL) | 0,7132 | 117,7 % |
DNase I (13,75 μg/ml) | 0,6077 | 100,32 % |
Vaccinia capping enzym (10 μg/mL) | 0,6563 | 108,3 % |
2´-O-Methyltransferase (10 μg/ml) | 0,5776 | 95,4 % |
1×IVT buffer | 0,5003 | 82,6 % |
1 mM Natriumcitrat | 0,6251 | 103,2 % |
Tabel 11. Genvinding af fortyndet STD3 tilsat IVT-materialer
- Temperatur dholdbarhed
Sættene blev opbevaret hos begge 4°C og 37°C at detektere koncentrationsafvigelserne af dsRNA-standard efter 7 dage. Resultaterne viser, at afvigelserne alle er inden for 20 %.
dsRNA Standard | dsRNA Målt (pg/μL) Dag 0 | Varianserne efter 7 dage ved 4°C |
STD1 | 1 | 10 % |
STD2 | 1 | 5 % |
STD3 | 2 | 7 % |
STD4 | 4 | 11 % |
dsRNA Standard | dsRNA Målt (pg/μL) | Varianserne efter 7 dage ved 37°C |
STD1 | 1 | 18 % |
STD2 | 1 | 4 % |
STD3 | 2 | 5 % |
STD4 | 4 | 8 % |
Tabel 12. Temperaturholdbarhedsanalyse
Relateret produkt:
Produktnavn | SKU | Specifikationer |
Dobbeltstrenget RNA (dsRNA) ELISA kit | 36717ES | 48T/96T |
CleaScrip™ T7 RNA-polymerase (lav ds RNA, 250 U/μL) | 10628ES | 10/100 KU |
T7 RNA polymerase GMP-grad (250 U/μL) | 10625ES | 10/100 KU |
Relateret læsning:
Det dobbeltstrengede RNA (dsRNA) ELISA-kit blev anvendt til at validere T7-RNA-polymerasemutanter med lavt dsRNA i forbindelse med J2-antistof-dot blot-metoden.
Lav dsRNA T7 RNA polymerase mutanter, styrker mRNA vaccine og terapi udvikling
Referencer:
- ICH, 2022: Analytisk metodevalidering Q2, udkast til version.
- NMPA, 2007: Generelle principper for evaluering af analytisk metodevalidering til biologisk produktkvalitetskontrolanalyse
- Chinese Pharmacopoeia Commission (ChPC), 2020: Chinese Pharmacopoeia, Del fire: Retningslinjer for validering af kvantitative analysemetoder for biologiske prøver