Einführung

01 Hintergrund

Magnetkügelchen wurden ursprünglich von John Ugelstad, einem Chemiker an der Norwegischen Universität für Wissenschaft und Technologie, entwickelt. Nach Verbesserungen gibt es heute viele verschiedene Arten von magnetischen Nanokügelchen. Die Trennprinzipien variieren je nach Oberflächeneigenschaften, aber ihre Materialien und Grundstrukturen sind ähnlich. Die Grundstruktur magnetischer Kügelchen ist in drei Schichten unterteilt: Die innerste Schicht besteht aus Polystyrol, die zweite Schicht umschließt die magnetische Substanz Fe₃O₄ und die äußerste Schicht besteht aus modifizierten funktionellen Gruppen (z. B. Carboxylgruppen), die an Nukleinsäuren binden können. Verschiedene Oberflächengruppen bestimmen die nachfolgenden Anwendungen magnetischer Kügelchen, z. B. Nukleinsäureextraktion, -reinigung und Biotinbindung.

Abbildung 1. Schematische Darstellung des Aufbaus magnetischer Perlen

02 Prinzip

Kommerzielle Magnetperlensysteme umfassen Magnetperlen, Polyethylenglykol (PEG), Salzionen usw. Die Hauptfaktoren, die die DNA-Rückgewinnung beeinflussen, sind PEG, DNA-Größe und -Konzentration, Inkubationszeit usw. Unter ihnen ist PEG der entscheidende Faktor. Hohe Konzentrationen von PEG und NaCl führen dazu, dass DNA ihre Hydratschicht abwirft, sich in eine Kugelform komprimiert und die negativ geladenen Phosphatgruppen freilegen. Durch die Bildung einer „elektrischen Brücke“ von Na+ mit den Carboxylgruppen auf der Oberfläche der Magnetkügelchen wird DNA an die Magnetkügelchen adsorbiert. Nach der Entfernung von PEG und NaCl bricht der Hydratationseffekt die Ionenbindungen auf und die DNA wird gereinigt. DNAs unterschiedlicher Länge können je nach Änderung der PEG- und Salzkonzentrationen selektiv ausgefällt werden.

Abbildung 2. Schematische Darstellung des Prinzips der DNA-Adsorption durch magnetische Kügelchen.

AAnwendungen

Magnetkügelchen werden bei der Hochdurchsatzsequenzierung aufgrund ihrer Eigenschaften für hohen Durchsatz und Eignung für die Automatisierung hoch geschätzt. Sie werden häufig für die Extraktion, Reinigung und Sortierung von DNA beim Aufbau von Next Generation Sequencing (NGS)-Bibliotheken verwendet.

01 Nukleinsäureextraktion

Bei der Extraktionsmethode mit magnetischen Kügelchen kann ein Zelllysepuffer, der als Proteindenaturierungsmittel wirkt, Zellen lysieren und Nukleinsäuren freisetzen. Magnetische Kügelchen sind positiv geladen und neigen dazu, negativ geladene Nukleinsäuren zu adsorbieren. Nach der Bindung werden Verunreinigungen durch Waschen und Magnetfelderfassung entfernt. Abschließend werden die Nukleinsäuren mit einem Elutionspuffer dissoziiert. Die gereinigte DNA/RNA kann für Tests wie PCR verwendet werden. Diese Methode wird in der Diagnostikbranche häufig angewendet und unterstützt eine Hochdurchsatz- und automatisierte Nukleinsäureextraktion.

Abbildung 3. Schematische Darstellung des Nukleinsäureextraktionsprozesses mit magnetischen Kügelchen.

02 DNA-Reinigung

Der Zweck der DNA-Reinigung besteht darin, nicht zielgerichtete Fragmente zu entfernen. Magnetkügelchen adsorbieren bevorzugt große Fragmente. Durch die Kontrolle des Anteils der Magnetkügelchen kann DNA bestimmter Größen selektiv adsorbiert und kleine Fragmente im Überstand verworfen werden. Schließlich wird die Ziel-DNA eluiert und zurückgewonnen. Sie wird häufig verwendet, um kleine Fragmente wie Adapter-Dimere/Primer-Dimere zu entfernen oder zur Probenanreicherung.

Abbildung 4. Schematische Darstellung des DNA-Reinigungsprozesses.

Während des DNA-Reinigungsprozesses mit Magnetkügelchen kommt es zu einem gewissen Probenverlust. Die Rückgewinnungseffizienz kann mit der Formel berechnet werden: Rückgewinnungseffizienz = (Masse der DNA nach der Reinigung / Masse der eingesetzten DNA) × 100 %. Die Daten zeigen, dass die Chargenstabilität der Yeasen DNA-Magnetkügelchen gut ist und die Rückgewinnungseffizienz mit der von XP-Magnetkügelchen vergleichbar ist, was sie zu einem kostengünstigen Alternativprodukt macht.

Tabelle 1. Berechnung der Rückgewinnungseffizienz magnetischer Perlen

Parallele Stichprobe

Probe

Eingabe (ng)

DNA-Reinigung(1,8×)

Anach der Reinigung(ng)

Rückgewinnungsprozentsatz %

ADurchschnittlicher Rückgewinnungsprozentsatz

Parallelprobe 1

A-XP

169,5

153,25

90,41 %

90,41 %

B-YS

159,75

94,25 %

94,50 %

C-YS

162

95,58 %

D-YS

158,75

93,66 %

Parallelprobe 2

A-XP

156

92,04 %

92,04 %

B-YS

156,5

92,33 %

93,51 %

C-YS

160

94,40 %

D-YS

159

93,81 %

【HINWEIS】: Die Testdaten der Magnetkügelchen stammen von einem bestimmten Biotechnologieunternehmen in Shanghai. In der Tabelle steht A für AMPure XP-Magnetkügelchen; B, C und D sind jeweils drei verschiedene Chargen von Yeasen-Magnetkügelchen.

03 DNA Doppelte Größenauswahl

Beim Next-Generation-Sequencing (NGS) müssen NGS-Bibliotheken eine bestimmte Länge erreichen. Mithilfe des Fragment-Screenings werden Zielfragmente aus fragmentierter DNA ausgewählt. Dabei wird die Eigenschaft ausgenutzt, dass magnetische Kügelchen bevorzugt große Fragmente adsorbieren. Nach der ersten Runde der Adsorption großer Fragmente werden die magnetischen Kügelchen verworfen und der Überstand aufbewahrt, wobei die Zielfragmente im Überstand verbleiben. In der zweiten Runde adsorbieren die magnetischen Kügelchen die Zielfragmente, und nach der Verwerfung des Überstands werden die Zielfragmente eluiert und zurückgewonnen.

Abbildung 5.DNA-Doppelgrößenauswahl Prozessübersicht

Um die Sortiergenauigkeit zu bewerten, werden die Fragmentgrößen, die unter verschiedenen Anteilen der magnetischen Perleneingabe sortiert werden, normalerweise mit dem Agilent 2100-Instrument erkannt.

Bei einem bestimmten Anteil magnetischer Perlen sollten die Fragmentverteilungen verschiedener Proben an derselben Stelle konzentriert sein. Der ideale Sortiereffekt ist ein einzelner schmaler und abgerundeter Peak an der Spitze. Aufgrund von Pufferunterschieden zwischen verschiedenen Herstellern variieren die Verteilungen bei einem bestimmten Anteil magnetischer Perlen. Vor der Verwendung ist es notwendig, in der Bedienungsanleitung nachzuschlagen, um den Sortieranteil der Zielfragmente zu bestätigen. Die Daten zeigen, dass bei gleichem Sortieranteil die Sortiereffekte von Yeasen-Magnetperlen und importierten XP-Magnetperlen sehr konsistent sind.

Tabelle 2. Typische Wiederherstellung

Probe

Doppelte Größenauswahl(0,65×/0,2×)

Eingabe (ng)

Nach Doppelte Größenauswahl(ng)

Rückgewinnungsprozentsatz %

Durchschnitt

Rückgewinnungsprozentsatz

A-XP

276,44

55,2

19,97 %

19,97 %

B-YS

61,35

22,19 %

22,84 %

C-YS

65,4

23,68 %

D-YS

62,55

22,63 %

【Hinweis】: Die Testdaten der Magnetkügelchen stammen von einem bestimmten Biotechnologieunternehmen in Shanghai. In der Tabelle steht A für AMPure XP-Magnetkügelchen, während B, C und D jeweils drei verschiedene Chargen von Yeasen-Magnetkügelchen sind.

Produktinformationen

Hieff NGSTM DNA-Selektionsperlen basieren auf dem SPRI-Prinzip und sind mit einem optimierten Puffersystem kombiniert. Sie eignen sich für die Sortierung und Reinigung von DNA-Fragmenten in Sequenzierungsbibliotheken der nächsten Generation. Dieses Produkt ist mit Bibliotheksbausätzen verschiedener Marken kompatibel und seine Fragmentrückgewinnungseffizienz und Bibliotheksgrößenverteilung ähneln denen von XP-Magnetperlen. Es ist erwähnenswert, dass der Preis für Yeasen-Magnetperlen nur 3 Yuan pro Bibliothek betragen kann, was dreimal niedriger ist als der der importierten XP-Magnetperlen!

Tabelle 3.Empfehlungen für Hieff NGSTM Serie Magnetperlenprodukte

Einstufung

von magnetischen

Perlen

Produktname

Produktnummer

Größen

Aktionspreis(¥ Yuan)

Anwendungen

DNA magnetische Perlen

Hieff NGSTM DNA-Selektionsperlen

12601ES08

5 ml

595

DNA-Reinigung

Auswahl der DNA-Größen
Reinigung von PCR-Produkten
Reinigung von Restriktionsenzymverdauungs- und Ligationsprodukten

12601ES56

60 ml

3775

12601ES75

450 ml

15715

Hieff NGSTM Intelligentere DNA Clean Beads

12600ES08

5 ml

835

Reinigung kleiner Fragmente (> 50 bp)
Reinigung kleiner Fragmente beim Aufbau einer CUT&Tag-Bibliothek
Reinigung kleiner Fragmente beim Aufbau einer ATAC-Seq-Bibliothek.

12600ES56

60 ml

4555

12600ES75

450 ml

17935

RNA

magnetische Perlen

Hieff NGSTM RNA-Reiniger

12602ES08

5 ml

635

Aufbau einer RNA-Bibliothek
Reinigung von Gesamt-RNA-Proben nach Entfernung ribosomaler RNA (rRNA)
Reinigung von in vitro transkribierten oder synthetisierten RNA-Produkten
Reinigung von RNA-markierten Produkten

12602ES56

60 ml

2555

12602ES75

450 ml

23135

Hieff NGSTM mRNA-Isolierungs-Masterkit V2

12629ES24

24 T

308

Isolierung und Reinigung von mRNA.
Konstruktion von Transkriptombibliotheken

12629ES96

96 T

1128

Anfrage