Leitfaden zur Produktauswahl für In-vitro-Zelltransfektionsreagenzien

Zelltransfektionsreagenzien sind zu Routinereagenzien für die Untersuchung und Kontrolle der Genfunktion in eukaryotischen Zellen geworden. Transfektionsreagenzien werden häufig in der Genfunktionsforschung, der Regulierung der Genexpression und der Mutationsanalyse sowie in der Gentherapie, Zelltherapie, Proteinproduktion und Impfstoffproduktion verwendet. Was ist also Transfektion? Und wie wählt man basierend auf seinen Experimenten eine Art Transfektionsreagenz aus?

Welche Arten der Transfektion gibt es?

Die Eigenschaften der Transfektionsreagenzien von Yeasen

Wie wählen Sie auf der Grundlage Ihrer Experimente eine Art Transfektionsreagenz aus?

Anwendungsfall

Referenz für Transfektionsbedingungen

FAQs

Grüße zum Lesen

Welche Arten der Transfektion gibt es?

Je nachdem, ob die Nukleinsäure nach der Transfektion in das Chromosom der Wirtszelle integriert ist, wird sie in „transient“ (vorübergehende Transfektion) und „stabil“ (stabile Transfektion) unterteilt. Die Transfektionseffizienz, Zytotoxizität, Auswirkungen auf die normale Physiologie und die Genexpressionsniveaus verschiedener Transfektionsmethoden sind unterschiedlich. Die Prinzipien, Anwendungen und Eigenschaften werden in der folgenden Tabelle verglichen:

Tabelle 1 Vergleich verschiedener Transfektionsmethoden

Technologie

Grundsätze

Vorteile

Nachteile

Chemische Transfektionsmethode

Kationische Liposomen

Positiv geladene Liposomen bilden Komplexe mit negativ geladenen Phosphatgruppen von Nukleinsäuren und werden von Zellen endozytiert.

  • Schnelle und einfache Bedienung
  • Ergebnisse sind reproduzierbar
  • Hohe Transfektionseffizienz
  • Transfizierbare DNA, RNA und Protein
  • Geeignet für die Produktion transienter und stabiler Proteine
  • Kann für In-vivo-Transfektion verwendet werden
  • Erfordert eine Optimierung der Bedingungen (einige Zelllinien reagieren empfindlich auf kationische Liposomen)
  • Manche Zelllinien lassen sich nicht leicht transfizieren
  • Die Anwesenheit von Serum stört die Komplexbildung, was zu einer geringen Transfektionseffizienz führt
  • Mangel an Serum im Medium erhöht die Zytotoxizität

Calciumphosphat-Kopräzipitation

Calciumphosphat-DNA-Komplexe adsorbieren an Zellmembranen und werden von Zellen endozytiert

  • Günstig und leicht zu bekommen
  • Geeignet für die Produktion transienter und stabiler Proteine
  • Hohe Transfektionseffizienz (nicht auf Zelllinien beschränkt)
  • Erfordert eine sorgfältige Reagenzienvorbereitung – CaPO4-Lösungen reagieren empfindlich auf Veränderungen des pH-Werts, der Temperatur und der Puffersalzkonzentration
  • schlechte Wiederholbarkeit
  • Zytotoxisch, insbesondere gegen Primärzellen
  • RPMI-Medium kann aufgrund der hohen Phosphatkonzentration nicht verwendet werden
  • Nicht zur Transfektion bei Tieren geeignet.

Dextran

Der durch die Wechselwirkung des positiv geladenen DEAE-Dextrans und des negativ geladenen Phosphatrückgrats der Nukleinsäure gebildete Komplex wird von der Zelle endozytiert.

  • Einfach zu bedienen
  • Ergebnisse sind reproduzierbar
  • Billig
  • Chemisch toxisch für bestimmte Zellen
  • Nur für transiente Transfektion
  • Geringe Transfektionseffizienz, insbesondere in Primärzellen.

Andere kationische Polymere

Das positiv geladene Polymer bildet einen positiv geladenen Komplex mit der negativ geladenen Phosphatgruppe der Nukleinsäure. Dann interagiert es mit dem negativ geladenen Proteoglykan auf der Zelloberfläche und gelangt durch Endozytose in die Zelle.

  • Stabil im Serum, unempfindlich gegenüber Temperatur
  • Hohe Transfektionseffizienz (begrenzte Zelllinien)
  • Ergebnisse sind reproduzierbar
  • Giftig für einige Zellen
  • Nicht biologisch abbaubar (Dendrimer)
  • Wird hauptsächlich für transiente Transfektion verwendet, weniger für stabile Transfektion

Biotransfektionsmethode

Virale Transfektion

Instinkt infiziert Zellen und liefert genetisches Material

  • Hohe Transfektionseffizienz
  • Für schwer zu transfizierende Zelllinien
  • Kann für In-vivo-Transfektion verwendet werden
  • Kann zur Konstruktion stabiler oder transienter Expressionszelllinien verwendet werden
  • Transfizierte Zelllinien müssen virale Rezeptoren enthalten
  • Die Größe der Geninsertionen ist begrenzt (~10 kb für virale Vektoren, ~100 kb für nicht-virale Vektoren)
  • Die Herstellung rekombinanter Proteine ​​ist technisch schwierig und zeitaufwändig
  • Es bestehen Probleme mit der Biosicherheit (Aktivierung der Grunderkrankung, immunogene Reaktion, Zytotoxizität, Insertionsmutagenese, maligne Transformation von Zellen).

Physikalische Transfektionsmethode

Elektrische Übertragung

Die hohe Impulsspannung stört das Zellmembranpotential und die DNA wird durch die in der Membran gebildeten Poren eingeführt.

  • Das Prinzip ist einfach
  • Optimierte Bedingungen für reproduzierbare Ergebnisse
  • kein Träger erforderlich
  • Unbegrenzte Zelltypen und -bedingungen
  • Optimierte Bedingungen für die schnelle Transfektion großer Zellzahlen
  • Spezialausrüstung erforderlich
  • Elektro-Puls- und Spannungsparameter müssen optimiert werden
  • Große Schäden an Zellen
  • Die Zelltodrate ist hoch und erfordert daher eine große Anzahl von Zellen
  • Schädigt die Zellmembranen irreversibel und führt zur Zelllyse

Biotransmission Partikelabgabe (Partikelbombardierung)

Die DNA wird mit mikroskopischen Schwermetallpartikeln ausgefällt, und dann werden die beschichteten Partikel mit einem ballistischen Gerät in die Zellen geschleudert, wodurch die DNA allmählich freigesetzt und in den Zellen exprimiert wird.

  • Unbegrenzte Zelltypen und -bedingungen
  • Kann zur Transfektion bei Tieren verwendet werden
  • Direkte Methode und zuverlässige Ergebnisse
  • Unbegrenzte Größe und Anzahl importierter Gene
  • Erfordert teure Ausrüstung
  • physische Beschädigung der Probe
  • Die Zelltodrate ist hoch und erfordert daher eine große Anzahl von Zellen
  • Müssen Partikel vorbereiten
  • Relativ geringe Transfektionseffizienz
  • Teuer für Forschungsanwendungen

Mikroinjektion

Mittels Mikromanipulation wird DNA direkt in den Zellkern der Zielzelle injiziert.

  • Unbegrenzte Zelltypen und -bedingungen
  • Einzelzelltransfektion
  • Direkte Methode und zuverlässige Ergebnisse
  • Unbegrenzte Größe und Anzahl importierter Gene
  • Kein Träger erforderlich
  • Erfordert teure Ausrüstung
  • Technisch anspruchsvoll und arbeitsintensiv (es kann immer nur eine Zelle gleichzeitig transfiziert werden)
  • Eine begrenzte Anzahl transfizierter Zellen
  • Führt häufig zum Zelltod

Die Merkmale von Transfektionsreagenzien von Yeasen

Für DNA-Transfektionsreagenzien und RNA-Transfektionsreagenzien verfügt Yeasen Biotechnology über ein starkes Forschungs- und Entwicklungs- sowie Produktionsteam, optimiert kontinuierlich Formeln, verbessert Produktionsprozesse und hat eine Vielzahl von Produkten auf der Basis kationischer Liposomen und kationischer Polymere auf den Markt gebracht. Wissenschaftliche Forschungseinrichtungen und Unternehmen bieten eine vollständige Produktpalette an, und die Produktlinie deckt alle Bereiche ab, die mit Transfektionsreagenzien zu tun haben.

Hieff Trans™ Liposomales Transfektionsreagenz

Hieff Trans™ Suspension Zellfreies liposomales Transfektionsreagenz

40802ES

40805ES

Hieff Trans™ in vitro siRNA/miRNA-Transfektionsreagenz

Polyethylenimin linear (PEI) MW40000(schnelle Lyse)

40806ES

40816ES

  • Hohe Effizienz: Geeignet für die vorübergehende oder stabile Transfektion von Zelllinien.
  • Geringe Toxizität: Transfizierte Zellen bleiben gut lebensfähig.
  • Breite Anpassungsfähigkeit: umfassende Abdeckung gängiger Zellen und schwer zu transfizierender Primärzellen.
  • Einfach zu bedienen: geeignet für Medium in Gegenwart von Serum, ohne Mediumwechsel vor und nach der Transfektion.
  • Kostengünstig: wirtschaftlich und praktisch, hohe Transfektionseffizienz, niedriger Preis.

Wie wählen Sie auf der Grundlage Ihrer Experimente eine Art Transfektionsreagenz aus?

Die Auswahl der Transfektionsreagenzien muss entsprechend den unterschiedlichen Versuchszwecken und Versuchsinhalten erfolgen, wie etwa den transfizierten Substanzen, spezifischen Zellen, der Benutzerfreundlichkeit und anderen Faktoren.

Produkt

Hieff Trans™ Liposomales Transfektionsreagenz

Hieff Trans™ Suspension Zellfreies liposomales Transfektionsreagenz

Hieff Trans™ in vitro siRNA/miRNA-Transfektionsreagenz

Polyethylenimin linear (PEI) MW40000(schnelle Lyse)

Zelltyp

konventionelle Zelle

konventionelle Zelle

konventionelle Zelle

konventionelle Zelle

/

/

schwer zu transfizierende Zellen

schwer zu transfizierende Zellen

Nukleinsäuretyp

DNA

DNA

/

DNA

siRNA

siRNA

siRNA

/

/

/

miRNA

/

/

/

miRNA nachahmen

/

/

/

antimiRNA

/

DNA/siRNA-Kotransfektion

DNA/siRNA-Kotransfektion

/

/

Virenverpackung

Virenverpackung

/

Virenverpackung

Anwendungsfall

Hieff Trans™ Liposomales Transfektionsreagenz

Hieff Trans™ wird in steriler flüssiger Form geliefert. Im Allgemeinen werden für die Transfektion in 24-Well-Platten jeweils etwa 1,5 μL, 1 ml Hieff Trans™ kann etwa 660 Transfektionen durchführen; für eine 6-Well-Platte, jeweils etwa 6 μL, 1 ml Hieff Trans™ kann etwa 660 Transfektionen durchführen. 160 Transfektionen;

Weitere Einzelheiten finden Sie unter Vertrauen in die Transfektion mit Hieff Trans™ Lipofectamine Reagent

Polyethylenimin linear (PEI) MW40000 (schnelle Lyse)

PEI 40000 ist ein hochgeladenes kationisches Polymer mit einem Molekulargewicht von 40.000, das sehr leicht negativ geladene Nukleinsäuremoleküle bindet, einen Komplex bildet und es dem Komplex ermöglicht, in Zellen einzudringen. PEI 40000 ist ein transientes Transfektionsreagenz mit geringer Zytotoxizität, hoher Transfektionseffizienz und hoher Genexpressioneffizienz in Zellen wie HEK293 und CHO. Lineare PEI-Transfektionsreagenzien wurden für eine breite Palette von Zelllinien validiert, darunter HEK-293, HEK293T, CHO-K1, COS-1, COS-7, NIH/3T3, Sf9, HepG2 und Hela-Zellen. Die Transfektionseffizienz beträgt bis zu 80 % bis 90 %.

Weitere Einzelheiten finden Sie unter Neuer Favorit für die Transfektion – Linear PEI MW 40000, ein effizienteres Transfektionsreagenz

Hieff Trans™ in vitro siRNA/miRNA-Transfektionsreagenz

Dieses Produkt kann eine Expressionseffizienz von über 90 % von 1 nM siRNA in einer Vielzahl von Zelllinien erreichen und so unerwünschte Effekte vermeiden. Geeignet für die Transfektion einer Vielzahl von Zellen, einschließlich Hela, MCF-7, HepG2, CHO und anderen adhärenten Zellen; und schwer zu transfizierende Suspensionszelllinien wie K562- oder THP-1-Zellen können eine Silencing-Effizienz von 80 % erreichen; einschließlich einiger Primärzellen, primärer menschlicher Fibroblasten und primärer menschlicher Hepatozyten usw. kann eine Silencing-Effizienz von 80 % erreicht werden.

Referenz für Transfektionsbedingungen

Zusätzlich zu den Anweisungen für jedes Produkt gehen Kunden gemäß ihrem spezifischen experimentellen Inhalt vor, und es gibt unterschiedliche Unterschiede in der Nutzungsmenge. Entsprechend den von Kunden nach Verwendung des Produkts gemeldeten In-vitro-Zelltransfektionsbedingungen wurden sie zu Ihrer Information sortiert.

Produktname/Artikelnummer

Hieff Trans™ Liposomales Transfektionsreagenz/40802ES

Zelle

Kulturgefäß

Zellbeschichtungsdichte

DNA

Hieff trans

Transfektionseffizienz

A549

6 gut

90 %

0,7 μg

1,15 μl

+++

BV 2

24 Brunnen

95 %

0,2 μg

0,2 μl

++

C2C12

24 Brunnen

80 % - 90 %

1 μg

5 μl

++

DF 1

24 Brunnen

80 % - 90 %

0,5 μg

0,5 μl

+++

H520

6 gut

80 %

1.2 μg

6 μl

++

HaCaT

96 Brunnen

70 %

100 ng

1 μl

++

HCT116

6 gut

90 %

4 μg

10 μl

++

HEK 293

6 gut

95 %

2 μg

10 μl

80 - 90 %

HEK 293FT

24 Brunnen

85 %

1 μg

4 μl

90 %

HEK 293T

12 Brunnen

1×105

1 μg

2 μL

+++

HEK 293T (Aufhängung)

30 ml

80 %

30 μg

60 μl

++

Hela

12 Brunnen

90 %

0,2 μg

0,6 μl

90 %

Hela

12 Brunnen

80 %

1 μg

3 μl

+++

HepG2

12 Brunnen

80 %

1 μg

3 μl

++

HUVEC

24 Brunnen

80 %

1 μg

2 μL

++

MCF10A

10 cm Schale

60 %

5 μg

15 μl

++

N2A

24 Brunnen

70 % - 80 %

300 ng

900 μl

+

NCI H1975

6 gut

80 %

4 μg

10 μl

+++

NIH 3T3

6 gut

90 %

4 μg

10 μl

+++

Roh 264.7

35 mm Schüssel

80 %

1 μg

2 μL

90 %

Vero

6 gut

80 %

3 μg

9 μl

+++

Zelle

Kulturgefäß

Zellbeschichtungsdichte

siRNA

Hieff trans

Transfektionseffizienz

HK2

6 gut

65 %

100 pmol

6 μl

+++

FAQs

1 Hieff Trans™ Liposomales Transfektionsreagenz

1.1 F: Kann bei der Herstellung von Nukleinsäure-Transfektionsreagenzkomplexen Serum vorhanden sein?

A: Das Vorhandensein von Serum beeinflusst die Bildung von Liposomen. Es wird empfohlen, bei der Herstellung von Nukleinsäure-Transfektionsreagenzkomplexen ein serumfreies Medium (im Allgemeinen MEM-Medium) zu verwenden.

1.2 F: Worauf muss ich bei der Verwendung des Hieff Trans™ Liposomal Nucleic Acid Transfection Reagent achten?

A:

1) Wenn die Zellen transfiziert werden, beträgt die Zelldichte vorzugsweise 80 %–95 %, und die spezifische Beschichtungsdichte wird entsprechend der Situation der Zellen bestimmt;

2) Die Verwendung hochreiner DNA trägt dazu bei, eine höhere Transfektionseffizienz zu erreichen;

3) DNA und Transfektionsreagenzien müssen bei der Herstellung von Transfektionskomplexen mit dem serumfreien Medium verdünnt werden;

4) Während der Transfektion dürfen dem Medium keine Antibiotika zugesetzt werden.

5) Reagenzien sollten bei 2–8 °C gelagert werden. Dabei ist darauf zu achten, dass der Deckel nicht über einen längeren Zeitraum wiederholt geöffnet wird.

6) Die DNA-Konzentration und die Anzahl der kationischen Liposomenreagenzien sollten für den ersten Einsatz optimiert werden, um eine maximale Transfektionseffizienz zu erzielen. Das Verhältnis von DNA zu Transfektionsreagenz sollte im Allgemeinen 1:2-1:3 betragen.

1.3 F: Muss es nach der Transfektion beendet werden?

A: Nicht nötig. Liposomenkomplexe sind 6 Stunden lang stabil. Wenn das Zellmedium vor der Transfektion nicht gewechselt wird, muss nach 4-6 Stunden auf ein neues Medium gewechselt werden, um die für ein normales Zellwachstum erforderlichen Nährstoffe sicherzustellen. Wenn das Medium jedoch vor der Transfektion gewechselt wurde, ist es nach der Liposomentransfektion nicht notwendig, das Medium zu wechseln.

1.4 F: Kann eine Kotransfektion von DNA und siRNA durchgeführt werden? Wie ist die Wirkung?

A: Ja, wenn DNA und siRNA gemeinsam transfiziert werden, ist die Effizienz der siRNA-Transfektion etwas schlechter.

1.5 F: Kann das Transfektionsreagenz zur Transfektion lentiviraler Verpackungen verwendet werden?

A: Eine lentivirale Verpackung ist möglich.

1.6 F: Können Suspensionszellen mit dem Hieff Trans™ Liposomal Nucleic Acid Transfection Reagent transfiziert werden?

A: Das Hieff Trans™ Liposome Nucleic Acid Transfection Reagent kann für die Transfektion von Suspensionszellen verwendet werden, Einzelheiten finden Sie im Protokoll. Darüber hinaus haben wir auch ein Transfektionsreagenz speziell für Suspensionszellen eingeführt (Kat.-Nr.40805, Hieff Trans™ Suspension, zellfreies liposomales Transfektionsreagenz)

2 Hieff Trans™ in vitro siRNA/miRNA-Transfektionsreagenz

2.1 F: Muss das Transfektionsreagenz nach der Transfektion gewechselt werden?

A: Dieses Problem kann in zwei Fälle unterteilt werden: 1. Wenn vor der Transfektion kein Mediumwechsel stattfindet, sollte das Medium etwa 6 Stunden nach der Transfektion gewechselt werden, um die für das Zellwachstum erforderlichen Nährstoffe sicherzustellen; 2. Wenn vor der Transfektion ein Mediumwechsel stattfindet, kann dann mit den kultivierten Zellen wie gewohnt verfahren werden? ? Nach dem Flüssigkeitswechsel?

2.2 F: Können Transfektionsreagenzien eingefroren werden?

A: Es kann nicht eingefroren werden, da es sich bei dem Transfektionsreagenz um ein kationisches PEI-Transfektionsreagenz handelt. Einfrieren bei niedrigen Temperaturen zerstört die Aktivität des PEI-Transfektionsreagenz. Daher ist es am besten, es bei 2-8 °C zu lagern, um die beste Transfektionswirksamkeit aufrechtzuerhalten.

Produktinformationen

Produktname Artikelnummer Technische Daten
Hieff Trans™ Liposomales Transfektionsreagenz 40802ES02 0,5 ml
40802ES03 1,0 ml
40802ES08 5×1ml
Hieff Trans™ Suspension Zellfreies liposomales Transfektionsreagenz (Anfrage) 40805ES02 0,5 ml
40805ES03 1,0 ml
40805ES08 5×1 ml
Hieff Trans™ in vitro siRNA/miRNA-Transfektionsreagenz (Erkundigen) 40806ES02 0,5 ml
40806ES03 1,0 ml
Polyethylenimin linear (PEI) MW40000(schnelle Lyse) 40816ES02 100 mg
40816ES03 1 g
40816ES08 5×1 g

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[1] Liu R, Yang J, et al. Optogenetische Kontrolle der RNA-Funktion und des RNA-Stoffwechsels mithilfe künstlicher lichtschaltbarer RNA-bindender Proteine. Nat Biotechnol. 3. Januar 2022 (IF:55)

[2] Luo J, Yang Q, et al. TFPI ist ein Kolonkryptenrezeptor für TcdB aus dem hypervirulenten Clade 2 C. difficile. Cell. 17. März 2022 (IF:41.582)

[3] Zhou J, Chen P, et al. Cas12a-Varianten, die durch strenge PAM-Erkennung für einen geringeren genomweiten Off-Target-Effekt entwickelt wurden. Mol Ther. 5. Januar 2022 (IF:11.454)

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[9] Xie F, Su P, et al. Entwicklung extrazellulärer Vesikel, angereichert mit palmitoyliertem ACE2, als COVID-19-Therapie. Adv Mater. 19. Oktober 2021. (IF:30.849)

[10] Liang Y, Lu Q, et al. Reaktivierung des Tumorsuppressors bei Brustkrebs durch Enhancer-Switching über das NamiRNA-Netzwerk. Nucleic Acids Res. 2021 Sep 7.(IF:16.9)

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[13] Zhang K, Wang A, et al. Die UBQLN2-HSP70-Achse reduziert Poly-Gly-Ala-Aggregate und lindert Verhaltensstörungen im C9ORF72-Tiermodell. Neuron. 16. Juni 2021 (IF:17.17)

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[15] Yan F, Huang C, et al. Threonin-ADP-Ribosylierung von Ubiquitin durch eine bakterielle Effektorfamilie blockiert die Ubiquitinierung des Wirts. Mol Cell. 21. Mai 2020 (IF:17.97)

[16] Sun X, Peng X, et al. ADNP fördert die neuronale Differenzierung durch Modulation der Wnt/β-Catenin-Signalgebung. Nat Commun. 12. Juni 2020 (IF:14.911)

[17] Yang X, Wang H, et al. Die Neuverdrahtung der ERBB3- und ERK-Signalgebung verleiht gastrointestinalem Krebs, der eine ERBB3-E928G-Mutation aufwies, Resistenz gegen die Hemmung von FGFR1. Protein Cell. 2020 Dez. (IF:14.872)

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Grüße zum Lesen

Transfektionsreagenz – Hieff Trans™ und PEI

Lineares PEI MW 40000, ein effizienteres Transfektionsreagenz

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