您是否正在尋找一種可靠的方法來檢測 mRNA 體外轉錄過程中殘留的 dsRNA?雙股 RNA(dsRNA)ELISA 試劑盒是您最好的選擇。然而,由於有幾種商業試劑盒可用,需要注意的是,驗證數據可能並不總是公開的,導致 dsRNA 檢測不一致。這就是我們分享雙股 RNA (dsRNA) ELISA 試劑盒驗證報告的原因,該報告涵蓋特異性、精確度、準確度、靈敏度和耐用性。本報告可作為驗證特定實驗條件和監管藥典標準的 dsRNA 殘留檢測方法的參考指南。請詳細了解我們的驗證報告 促進dsRNA檢測的標準化。
雙股 RNA(dsRNA)ELISA 鉀它
背景:
雙股 RNA(dsRNA)ELISA 試劑盒是用於檢測 mRNA 體外轉錄過程中產生的殘留 dsRNA 的試劑盒。本試劑盒採用雙抗體夾心酵素連結免疫吸附試驗(ELISA)的實驗原理及生物素-鏈黴親和素擴增系統,可靈敏地檢測樣本中殘留的dsRNA。
匯總資料包含涵蓋特異性、精確度、準確性、敏感性和耐用性的驗證參數。該報告作為參考指南,敦促用戶根據其特定實驗條件驗證 dsRNA 殘留檢測方法並遵守監管藥典標準。
材料與方法:
成套工具: 雙股 RNA (dsRNA) ELISA 試劑盒:Cat#36717ES(
方法:實驗所需的材料和程序步驟主要由
結果
- dsRNA 標準的線性
本報告針對所有四種不同類型的 dsRNA 標準制定了標準曲線,每種標準曲線的長度為 300bp。這些標準包括STD1,未修飾的dsRNA; STD2,偽 UTP 修飾的 dsRNA; STD3,N1-Me-Pseudo-UTP 修飾的 dsRNA;和STD4、5-OMe-UTP修飾的dsRNA。每種 dsRNA 標準都表現出優異的稀釋線性,R2 > 0.99,測量濃度的變異係數 (CV) 小於 10%,如表 1 至表 5 所示。
性病名稱 | UTP 類型 | 稀釋線性 (R2>0.99) | 履歷 |
STD1 | 超五類雙絞線 | 0.0156-1皮克/微升 | <10% |
STD2 | 尿苷三磷酸 | 0.0156-1皮克/微升 | <10% |
STD3 | N1-甲基-pUTP | 0.0312-1皮克/微升 | <10% |
STD4 | 5-甲基-UTP | 0.0625-1皮克/微升 | <10% |
表 1. 不同 dsRNA 標準的線性。
STD1 濃度n。 (皮克/微升) | 測量平均值 (皮克/微升) | 恢復 | 履歷 |
1 | 1.0001 | 100.0% | 3.1% |
0.5 | 0.4994 | 99.9% | 2.4% |
0.25 | 0.2516 | 100.7% | 3.3% |
0.125 | 0.1227 | 98.1% | 0.5% |
0.0625 | 0.0640 | 102.5% | 3.2% |
0.0312 | 0.0309 | 99.2% | 1.3% |
0.0156 | 0.0157 | 100.4% | 3.2% |
0 | / | / | / |
表 2.恢復和簡歷 稀釋的 STD1
STD2 濃度n。 (皮克/微升) | 測量平均值 (皮克/微升) | 恢復 | 履歷 |
1 | 1.0001 | 100.0% | 0.7% |
0.5 | 0.4994 | 99.9% | 0.1% |
0.25 | 0.2514 | 100.6% | 0.9% |
0.125 | 0.1232 | 98.6% | 2.5% |
0.0625 | 0.0635 | 101.6% | 1.1% |
0.0312 | 0.0312 | 99.9% | 0.5% |
0.0156 | 0.0155 | 99.6% | 0.0% |
0 | / | / | / |
表 3. 回收率和 CV 稀釋的 STD2
STD3 濃度 (皮克/微升) | 測量平均值 (皮克/微升) | 恢復 | 履歷 |
2 | 2.0031 | 100.2% | 1.6% |
1 | 0.9880 | 98.8% | 2.4% |
0.5 | 0.5188 | 103.8% | 1.2% |
0.25 | 0.2383 | 95.3% | 2.2% |
0.125 | 0.1242 | 99.4% | 0.1% |
0.0625 | 0.0629 | 100.7% | 1.8% |
0.0312 | 0.0361 | 115.7% | 1.6% |
0 | / | / | / |
表 4. 回收率和 CV 稀釋的 STD3
STD4 濃度 (皮克/微升) | 測量平均值 (皮克/微升) | 恢復 | 履歷 |
4 | 4.0096 | 100.2% | 1.9% |
2 | 1.9940 | 99.7% | 0.7% |
1 | 0.9977 | 99.8% | 0.1% |
0.5 | 0.5108 | 102.2% | 0.1% |
0.25 | 0.2454 | 98.2% | 5.6% |
0.125 | 0.1207 | 96.5% | 2.8% |
0.0625 | 0.0624 | 99.9% | 0.3% |
0 | / | / | / |
表 5. 回收率和 CV 稀釋的 STD4
-
特異性
- 使用 dsRNA、ssRNA、dsDNA 和 ssDNA 進行特異性分析。
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- 特異性不受 dsRNA 長度的影響。
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-
一個準確度
加入 0.5 pg/μL STD1 將已知 dsRNA 含量為 0.36 pg/μL 的 mRNA 樣本以三種不同體積比(1:1、1:20、1:250)純化。在所有情況下,尖峰迴收率都在 80-120% 範圍內。
加標回收率計算如下:加標 恢復 速率=(測量 專注 後 加標量×總量 體積 的 尖刺 樣品−測量 專注 的 這 樣本×總數 體積 的 這 樣品)/(理論 專注 的 這 峰值×體積 的 這 峰值)×100%
範例 | STD1/樣品體積比 | 測量 dsRNA (皮克/微升) | 長釘 恢復 速度 |
樣本 (TS) | / | 0.36 | / |
TS+0.5pg/μL STD1 | 1:1 | 0.769 | 81% |
TS+0.5pg/μL STD1 | 1:20 | 0.777 | 82% |
TS+0.5pg/μL STD1 | 1:250 | 0.803 | 82% |
表 6. 加標回收率 分析
-
精確
- 批內精密度
對四個 dsRNA 標準樣本分別在三個濃度水平(高、中、低)上進行了實驗。在一次實驗中,每個濃度樣本經過八次重複測試。結果顯示變異係數(CV)低於15% 表示具有良好的批內精度。
STD1 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
1 | 8 | 1.0002 | 3.11% |
0.125 | 8 | 0.1230 | 0.46% |
0.0156 | 8 | 0.0164 | 3.18% |
STD2 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
1 | 8 | 1.0001 | 0.65% |
0.125 | 8 | 0.1231 | 2.46% |
0.0156 | 8 | 0.0162 | 0.02% |
STD3 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
2 | 8 | 2.0022 | 1.58% |
0.25 | 8 | 0.2444 | 2.17% |
0.0312 | 8 | 0.0328 | 1.64% |
STD4 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
8 | 8 | 8.0803 | 0.27% |
1 | 8 | 0.9650 | 0.12% |
0.125 | 8 | 0.1322 | 2.76% |
表 7. 批內精密度分析
- 批間精密度
使用來自 3 個 批次。在每個實驗中,選擇高、中、低濃度,對四個 dsRNA 標準樣本分別進行三次測試,重複八次。因此,每次採集 24 個數據點 濃度水平,然後進行變異係數(CV)分析。
STD1 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 獨立測試/重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
1 | 3/8 | 1.0007 | 2.38% |
0.125 | 3/8 | 0.1186 | 3.20% |
0.0156 | 3/8 | 0.0173 | 1.27% |
STD2 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 獨立測試/重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
1 | 3/8 | 0.9987 | 0.09% |
0.125 | 3/8 | 0.1269 | 1.06% |
0.0156 | 3/8 | 0.0151 | 0.52% |
STD3 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 獨立測試/重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
2 | 3/8 | 2.0012 | 2.37% |
0.25 | 3/8 | 0.2415 | 0.14% |
0.0312 | 3/8 | 0.0330 | 1.81% |
STD4 | |||
理論 濃度 (皮克/微升) | 獨立測試/重複 | 測量平均值 (pg/μL) | 履歷 |
8 | 3/8 | 7.9735 | 1.89% |
1 | 3/8 | 1.0225 | 0.13% |
0.125 | 3/8 | 0.1227 | 5.63% |
表 8. 批間精密度分析
-
敏感度
- 詳細程度
檢測極限 成套工具 透過將兩倍標準差加到空白值的平均值來確定。透過測量24個空白樣品的OD值,計算其平均值和標準差,然後將這些值應用到擬合曲線上,得到對應的檢測極限 得到。
| 外徑 |
| ||
雙股RNA 標準 | 空白平均值 | 標準差 的空白 | 空白平均值+2SD | 詳細程度 |
STD1 | 0.016 | 0.00048 | 0.01696 | ≤0.001pg/μL |
STD2 | 0.016 | 0.00072 | 0.01744 | ≤0.001pg/μL |
STD3 | 0.034 | 0.00119 | 0.03638 | ≤0.001pg/μL |
STD4 | 0.115 | 0.00290 | 0.1208 | ≤0.01pg/μL |
表 9. LOD 分析
- 最低定量限
數量限制 成套工具 是透過將標準曲線的最低濃度點稀釋到更低的水平來建立的,確保最低濃度下的 CV < 20%,從而定義定量閾值。 LOQ如下。
雙股RNA 標準 | 最低定量限 | 重複 | 簡歷(%) | 恢復 (%) |
STD1 | 0.0156 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
STD2 | 0.0312 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
STD3 | 0.0156 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
STD4 | 0.125 皮克/微升 | 24 | <10% | 80~120% |
-
德耐用性
- 抗IVT材料幹擾
這次測試 旨在評估添加到 信差核糖核酸 用該試劑盒對樣本的 dsRNA 進行檢測。
將特定濃度的 T7 RNA 聚合酶、RNAse 抑制劑、IPPA(無機焦磷酸酶)、DNase I、VCE(痘苗加帽酶)、2'-O-甲基轉移酶 (MT)、1×IVT 緩衝液和 1mM 檸檬酸鈉加入提供的 mRNA 樣本中,然後利用 STD3 用於標準曲線製備和樣品測試,可以評估該試劑盒檢測這些樣品中 dsRNA 含量的能力 樣品。結果表明,八種不同酵素和緩衝液的存在不會影響 dsRNA 的準確檢測。此外,觀察到的回收率在 80% 至 120% 範圍內。
IVT 材料 | 雙股RNA 測量值 (pg/μL) | 恢復 |
沒有任何 | 0.6057 | 100% |
T7 RNA聚合酶(15μg/mL) | 0.5411 | 89.32% |
小鼠 RNase 抑制劑 (27.5μg/mL) | 0.5142 | 84.88% |
無機焦磷酸酶(IPPA 10μg/mL) | 0.7132 | 117.7% |
脫氧核糖核酸酶 I (13.75μg/毫升) | 0.6077 | 100.32% |
痘苗加帽酶(10μg/mL) | 0.6563 | 108.3% |
2´-O-甲基轉移酶 (10μg/mL) | 0.5776 | 95.4% |
1×IVT緩衝器 | 0.5003 | 82.6% |
1毫米 檸檬酸鈉 | 0.6251 | 103.2% |
表 11. 添加 IVT 材料的稀釋 STD3 的回收率
- 溫度d耐用性
這些工具包分別存放在 4°C 和 37°C 檢測7天後dsRNA標準品的濃度變化。結果表明,變異數均在20%以內。
雙股RNA 標準 | 雙股RNA 測量值(pg/μL)第 0 天 | 差異 4°C 下 7 天后 |
STD1 | 1 | 10% |
STD2 | 1 | 5% |
STD3 | 2 | 7% |
STD4 | 4 | 11% |
雙股RNA 標準 | 雙股RNA 測量值 (pg/μL) | 差異 37°C 下放置 7 天后 |
STD1 | 1 | 18% |
STD2 | 1 | 4% |
STD3 | 2 | 5% |
STD4 | 4 | 8% |
表12. 溫度耐久性分析
相關產品:
產品名稱 | 庫存單位 | 規格 |
雙股 RNA(dsRNA)ELISA 試劑盒 | 36717ES | 48噸/96噸 |
CleaScrip™ T7 RNA 聚合酶(低 ds RNA,250 U/μL) | 10628ES | 10/100 庫拉索 |
T7 RNA聚合酶 GMP等級(250 U/μL) | 10625ES | 10/100 庫拉索 |
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參考:
- ICH,2022:分析方法驗證 Q2,草案版本。
- 國家藥品監督管理局,2007年:《生物製品品質管制分析方法驗證評估通則》
- 國家藥典委員會(ChPC),2020年版:《中國藥典》第四部:生物樣品定量分析方法驗證指導原則